汤明杰，颜识涵，张明焜，魏东山, 杜春雷*，崔洪亮

1. 中国科学院重庆绿色智能技术研究院，重庆市跨尺度制造重点实验室，重庆 400714 2. 中国科学院大学，北京 100049

引 言

基因是携带了遗传信息的DNA或RNA序列，是控制生物性状的基本遗传单位。碱基是核酸分子(包括DNA和RNA)的重要组成部分，此外，核酸中还有一些含量较少的稀有碱基，大部分是碱基的甲基衍生物。碱基是核酸信息存储和传递的基础，是生物遗传、 进化和变异的根本原因，所以研究核酸分子碱基对研究生物活性和生物行为具有重要意义[1-5]。因此，研究核酸分子碱基的光谱特征对于表征核酸分子结构的改变和核酸分子与小分子的相互作用提供参考价值。

太赫兹(THz)辐射介于微波和红外之间，频率范围大概在0.1～10 THz。虽然有些太赫兹辐射会影响DNA的动态过程，进而影响DNA的复制和基因表达[6-7]，甚至高强度的太赫兹脉冲会造成DNA损伤[8]，但是辐射强度低的太赫兹并不会影响DNA分子的结构和功能[9-10]。近年来，太赫兹时域光谱技术(Terahertz time-domain spectroscopy，THz-TDS)已被广泛应用于化学检测、 材料鉴定和生物医学[11-13]。太赫兹光谱对分子间氢键的相互作用非常敏感，许多低频的振动模式(例如骨架振动)位于THz波段。

采用THz-TDS检测了DNA、 RNA碱基(胞嘧啶(C)、 鸟嘌呤(G)、 腺嘌呤(A)、 胸腺嘧啶(T，DNA专有)和尿嘧啶(U，RNA专有)和稀有碱基[5-甲基胞嘧啶(m5C)、 1-甲基腺嘌呤(m1A)]的太赫兹光谱，同时与拉曼光谱技术对7种碱基的检测能力作了对比，探讨了两种光谱技术检测7种核酸碱基的可行性。

1 实验部分

1.1 样品制备

7种核酸碱基的分子结构式如图1所示。制备每种碱基样品时，先称取0.12 g左右粉末放入直径为13 mm的压片磨具内，轻微震荡使其分布均匀，使用压片机在2 MPa的压力下做成厚度为0.6～0.9 mm的圆盘状薄片进行太赫兹时域光谱和拉曼光谱实验。实验中采用了一个自行设计的样品夹具将样品夹在带有小孔的两个靠磁性吸附在一起的薄片之间，样品尺寸略大于小孔(如图2所示)。

图1 7种核酸碱基的分子结构式Fig.1 7 Molecular structural formulas of nucleic acid bases

图2 自制样品夹具示意图1: 夹具底座; 2: 带孔铁片; 3: 样品片; 4: 带孔的橡胶磁薄片Fig.2 The schematic diagram of self-made sample fixture1: Fixture base; 2: Iron sheet with holes;3: Sample sheet; 4: Rubber sheet with holes

1.2 碱基的太赫兹时域光谱检测

采用T-Ray 5000 THz-TDS系统(Advanced Photonix Inc.，美国)。实验在室温(约294 K)下进行，为了避免空气中水分对THz波的影响，实验装置放在充有氮气的密封箱内，保证样品在测量时的湿度被控制在3%左右。在分析碱基的太赫兹时域光谱时，首先对太赫兹时域光谱进行傅里叶变换求取频域光谱，然后根据如下物理模型求取样品的吸收系数

其中，n为样品折射率，φ(ω)为样品信号和参考信号的相位差，ω为角频率，d为样品的厚度，a为样品吸收系数，ρ(ω)为样品信号和参考信号的振幅之比。

1.3 碱基的拉曼光谱检测

测试样品拉曼光谱所采用的设备为英国Renishaw inVia Reflex拉曼光谱仪，直接对粉末进行测量。选用532 nm激光器。实验时，首先用洁净的硅片进行校准，校准硅片的拉曼峰值位置在520 cm-1。在分析碱基的拉曼光谱时，将得到的碱基拉曼光谱分别进行基线校准，平滑和归一化处理。

2 结果与讨论

2.1 碱基的太赫兹时域光谱分析

图3为DNA和RNA碱基(胞嘧啶(C)、 鸟嘌呤(G)、 腺嘌呤(A)、 胸腺嘧啶(T，DNA专有)和尿嘧啶(U，RNA专有)和稀有碱基[5-甲基胞嘧啶(m5C)、 1-甲基腺嘌呤(m1A)]和背景样品池的太赫兹时域光谱。图4为DNA、 RNA碱基(胞嘧啶(C)、 鸟嘌呤(G)、 腺嘌呤(A)、 胸腺嘧啶(T，DNA专有)和尿嘧啶(U，RNA专有)和稀有碱基(5-甲基胞嘧啶(m5C)、 1-甲基腺嘌呤(m1A)在0.2～2.0 THz的太赫兹吸收谱。从图中可以看出，DNA的4种碱基差异明显，只有G没有明显吸收峰，A有两个吸收峰，T和C各有一个吸收峰，峰位不同；RNA的4种碱基差异也很明显，G没有明显吸收峰，A有两个吸收峰，U和C各有一个吸收峰，峰位不同；碱基C和稀有碱基m5C也有很大差异，稀有碱基m5C没有明显的特征峰，但吸收系数较高，随着频率的增加，m5C吸收谱线缓慢上升；碱基A和稀有碱基m1A也有很大差异，稀有碱基m1A有一个较为明显的特征峰，且吸收系数明显高于其他6种碱基；7种碱基在太赫兹特征峰和吸收强度上差异显著。表1列出了7种核酸碱基的太赫兹特征吸收峰。

图3 DNA、 RNA碱基(胞嘧啶(C)、 鸟嘌呤(G)、 腺嘌呤(A)、 胸腺嘧啶(T，DNA专有)和尿嘧啶(U，RNA专有)和稀有碱基[5-甲基胞嘧啶(m5C)、 1-甲基腺嘌呤(m1A)]和背景样品池的太赫兹时域光谱Fig.3 THz time-domain spectra of DNA, RNA bases (cytosine (C), guanine (G), adenine (A), thymine (T, DNA-specific) and uracil (U, RNA-specific) and rare bases (5-methylcytosine (m5C), 1-methyladenine (m1A) and background sample cell

图4 DNA、 RNA碱基(胞嘧啶(C)、 鸟嘌呤(G)、 腺嘌呤(A)、 胸腺嘧啶(T，DNA专有)和尿嘧啶(U，RNA专有)和稀有碱基(5-甲基胞嘧啶(m5C)、 1-甲基腺嘌呤(m1A))在0.2～2.0 THz的太赫兹吸收谱Fig.4 Terahertz absorption spectra of DNA, RNA bases (cytosine (C), guanine (G), adenine (A), thymine (T, DNA-specific) and uracil (U, RNA-specific) and rare bases (5-methylcytosine (m5C), 1-methyladenine (m1A)) at 0.2 to 2.0 THz

表1 7种核酸碱基的太赫兹特征吸收峰 (THz)Table 1 Terahertz characteristic absorption peaks of 7 nucleic acid bases (THz)

2.2 碱基的拉曼光谱分析

图5为DNA、 RNA碱基(胞嘧啶(C)、 鸟嘌呤(G)、 腺嘌呤(A)、 胸腺嘧啶(T，DNA专有)和尿嘧啶(U，RNA专有)和稀有碱基(5-甲基胞嘧啶(m5C)、 1-甲基腺嘌呤(m1A)在600～1 750 cm-1的拉曼光谱。从图5可以看出，7种碱基也表现出很多明显的不同的拉曼谱峰，但其特征峰杂而多，较难直观识别。

图5 DNA、 RNA碱基(胞嘧啶(C)、 鸟嘌呤(G)、 腺嘌呤(A)、 胸腺嘧啶(T，DNA专有)和尿嘧啶(U，RNA专有)和稀有碱基(5-甲基胞嘧啶(m5C)、 1-甲基腺嘌呤(m1A))在600～1750 cm-1的拉曼光谱Fig.5 Raman spectra of DNA, RNA bases (cytosine (C), guanine (G), adenine (A), thymine (T, DNA-specific) and uracil (U, RNA-specific) and rare bases (5-methylcytosine (m5C), 1-methyladenine (m1A)) from 600 to 1 750 cm-1

3 结 论

针对DNA和RNA碱基和稀有碱基样品，应用THz-TDS 技术和拉曼光谱技术进行了对比研究。结果表明，在THz-TDS实验中，胞嘧啶(C)、 鸟嘌呤(G)、 腺嘌呤(A)、 胸腺嘧啶(T，DNA专有)和尿嘧啶(U，RNA专有)和稀有碱基[5-甲基胞嘧啶(m5C)、 1-甲基腺嘌呤(m1A)]在0.2～2.0 THz频段内特征吸收峰和吸收强度差异显著，可以直观地识别出7种碱基的差异；拉曼光谱中，7种碱基也表现出很多明显的不同特征峰，而正是由于拉曼光谱的特征峰杂而多，故不能直观的识别多种物质。且其吸收强度的差异与粉末的厚度，粒度和光聚焦的深度有关，样品的荧光还会给拉曼光谱带来干扰，同时激光还可能会损伤生物样品。这说明THz-TDS技术在识别这7种碱基的能力上优于拉曼光谱技术。THz-TDS技术不仅为DNA和RNA碱基和稀有碱基的识别提供了一种快速和准确的检测方法，也为生物遗传学研究奠定实验基础。