张 瑞 岳 稳 刘荣昌 黄 瑜＊

（1.福建农林大学动物科学学院 福州 350002；2.福建省农业科学院畜牧兽医研究所 福州 350013）

鸭病毒性肝炎（Duck Viral Hepatitis,DVH）是由鸭甲肝病毒（Duck Hepatitis A Virus,DHAV）引起的一种急性、高度接触性传染病。该病以发病急、传播快、病死率高为特征，主要感染3周龄以内的雏鸭，感染宿主涉及各品种鸭。根据病毒基因组差异，DHAV可分为DHAV-1（A型）、DHAV-2（B型）和DHAV-3（C型）三种不同的血清型。DHAV-1即为传统的DHV血清Ⅰ型；DHAV-2目前仅在中国台湾有过报道，也称为台湾型；DHAV-3首次在韩国报道，也称韩国型[1]。目前，中国大陆地区主要流行DHAV-1和DHAV-3[2]。

雏鸭感染DVH后通常表现为全身性抽搐、两脚痉挛、运动失调等神经症状，死亡后雏鸭呈典型的角弓反张。剖检病死鸭主要可见肝脏肿大、质脆，表面有大小不等的出血斑或出血点[1]。2012年，傅光华等[3]报道在我国福建、浙江、上海等地雏番鸭发生以胰腺发黄、出血为主要临床特征的病例，后经鉴定该病病原为胰腺型DHAV-1。2018年，Zhang等[4]从临床表现为采食量及产蛋量下降的樱桃谷种鸭中分离到DHAV-1，后经动物回归试验证实，该分离株可感染樱桃谷种鸭并引起产蛋下降。由此可见，当前国内已出现DHAV的多种不同基因型或致病型，该病毒的临床感染病例值得进一步关注。该文就2019年10月福建省三明市某8日龄番鸭群疑似感染DVH的病例进行了详细诊断、检测及跟踪治疗，以期为同行提供参考借鉴。

1 发病情况

2019年10月，福建省三明市某鸭场饲养的近3 000羽雏番鸭于8日龄开始发病，主要表现为采食量下降，精神沉郁；部分鸭死前有明显神经症状，死后呈角弓反张姿势。到发病后第5 d，病死率达27%，期间使用多种抗生素等常规治疗无效。

2 剖检病变

对病死雏鸭剖检可见肝肿大，表面有花斑状出血点和出血斑；脾脏和肾脏肿大、出血；胆囊胀大、充盈胆汁。无菌采集病死鸭肝脏、脾脏、肾脏和脑组织进行实验室检查。

3 实验室检查

将上述采集的组织分成2份，按照常规方法处理后，一部分用于细菌分离与鉴定，另一部分用于鸭常见病毒（RT）PCR检测。

3.1 细菌分离与鉴定 无菌取病死鸭肝脏和脑组织等病料分别接种于麦康凯琼脂平板、鲜血琼脂平板和普通琼脂平板上，37℃恒温培养24～48 h，结果未见菌落生长。

3.2 病毒（RT）PCR检测 参照文献[5]说明，对处理后的临床样品进行DHAV、鸭腺病毒、禽流感病毒等鸭常见病毒进行（RT）PCR检测。结果如图1所示，仅DHAV-1为阳性，其余病毒均为阴性。

图1 样品PCR产物电泳图

3.3 序列测定与分析 将（RT）PCR阳性扩增产物送铂尚生物技术（上海）有限公司测序，对获得序列使用NCBI blast进行在线比对。结果，该序列与NCBI数据库中的DHAV-1毒株同源性最高。

3.4 结果判定 根据以上发病情况、临床症状、剖检病变及实验室检测结果，初步判定引起该群雏番鸭发病是感染DHAV-1所致。

4 治 疗

根据该场鸭群发病情况，采取以下综合防治措施。

1）根据临床表现，对出现采食量下降、精神沉郁等表现的雏番鸭进行隔离饲养；对病死鸭、频死鸭以及出现明显鸭肝炎临床症状的鸭进行淘汰并做无害化处理。

2）加强饲养管理，减少应激；做好鸭场卫生清洁，对鸭舍地面、墙壁、饲养器具及运动场进行彻底消毒，每天1次，连续4 d。

3）对所有鸭肌肉注射DHAV-1高免卵黄抗体，1mL/羽；病情较重的鸭，于第3 d再注射1次。

4）对所有鸭以电解多维、黄芪多糖按照使用说明书用量饮水3 d，每天1次，以提高鸭群抵抗力。通过采取以上综合措施，疫情于注射DHAV-1高免卵黄抗体后2 d得到控制，6 d后基本痊愈。

5 讨论与体会

1）我国自1963年首次报道鸭病毒性肝炎以来，该病目前在国内大部分地区流行。随着DVH疫苗及其高免卵黄抗体的研制与应用，该病曾得到有效控制。但近年来随着DHAV-3的重新流行，以及胰腺型DHAV-1和引起种鸭产蛋下降的DHAV-1出现，使得临床上该病的诊断和防控愈加复杂。

2）雏鸭感染DHAV（1型或3型）通常以肝脏、肾脏肿大出血，以及死前的神经症状及死后角弓反张等症状为特征。临床上，DVH需要与近年来新流行的鸭腺病毒2型或3型相鉴别，鸭腺病毒2型或3型感染鸭虽也呈现肝脏、脾脏及肾脏肿大和出血，但该病还表现为感染鸭的肝白化或肝黄化以及心包积液，且感染鸭死前无神经症状，死后亦无角弓反张[6-7]。由于当前临床上出现新的DHAV致病性或亚型与经典DHAV之间抗体交叉保护率不高[8]，所以广大养鸭从业者仍需密切注意该病在当地的流行情况，以选择合适的疫苗进行提前免疫防控。