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罗氏沼虾转录组免疫相关SNP的挖掘与分析

2019-08-10唐修阳王传聪项杰欧江涛王资生

江苏农业科学 2019年4期
关键词:转录组免疫抗病

唐修阳 王传聪 项杰 欧江涛 王资生

摘要:为了挖掘罗氏沼虾免疫相关单核苷酸多态性(SNP),采用第二代高通量测序技术,对罗氏沼虾的肝胰腺进行转录组深度测序分析。结果发现SNP位点37 589个,其中转换25 188个,颠换12 401个。再对SNP所在的基因进行GO(gene ontology)分类和KOG注释,分别筛选到2 451个有GO注释和2 458个有KOG注释的SNP,并重点对4个重要免疫通路的145个免疫相关基因,筛选出129个SNP位点。相关研究结果将为进一步系统挖掘免疫相关SNP的分子遗传标记奠定基础,为罗氏沼虾疾病防控和选育抗病新品种提供科学参考。

关键词:罗氏沼虾;转录组;SNP;高通量测序技术;免疫;抗病

中图分类号: S942.5  文献标志码: A  文章编号:1002-1302(2019)04-0145-04

罗氏沼虾(Macrobrachium rosenbergii)又名马来西亚大虾、淡水长臂虾等,广泛分布在江苏、广东和浙江等17个省(市、自治区),年产量超过12万t,是重要的淡水养殖经济虾种之一[1-2]。近年来,由于种质退化、病原滋生等原因,造成罗氏沼虾养殖生产中存在生长缓慢、抗病性减弱以及繁殖力下降等问题,给我国渔业带来严重的经济损失,同时也制约了水产甲壳类动物的可持续发展,相关问题的解决现已提上日程[3-4]。

单核苷酸多态性(single nucleotide polymorphism,简称SNP),通常是指基因组中单个碱基变异所引起的遗传多态性,其变异类型主要包括转换、颠换、缺失和插入。单碱基突变,可导致蛋白发生变异,从而影响生命体有关性状的生物学功能;已有大量研究表明,许多免疫通路中关键基因的SNP是很好的分子免疫遗传标记,在宿主的疾病防控和抗病育种中具有十分重要的意义[5-7]。

通过转录组测序技术,结合物种基因组信息,可以更容易地找到与目标性状相关的SNP。本研究通过对罗氏沼虾肝胰腺转录组的深度测序分析,筛选出大量SNP位点,并对这些SNP所在的基因进行功能注释,重点对重要免疫通路中的关键基因进行了系统的免疫相关SNP的挖掘与筛选。相关结果将为罗氏沼虾的抗病研究提供新的方法与思路,可为下一步抗病分子设计育种提供科学的理论与试验依据。

1 材料与方法

1.1 试验动物与螺原体感染

动物的感染试验于2013年在南京师范大学的江苏省水生甲壳动物病害重点实验室开展,试验动物为100尾罗氏沼虾,个体质量为20~25 g,螺原体检测结果均为阴性,于26~28 ℃水温养殖备用。螺原体在R2液体培养基中于30 ℃孵育48 h,待其生长到对数期备用[8],将罗氏沼虾均分成2组。对照组注射100 μL无螺原体的R2培养基;试验组注射 100 μL 含螺原体MR-1008的R2培养基。

1.2 罗氏沼虾肝胰腺转录组数据的获得和SNP检测

肝胰腺组织总RNA采用Trizol(Invitrogen公司)提取法提取,提取产物通过Agilent 2100 Bioanalyzer(美国)(D260 nm/D280 nm為1.8~2.2)和15 g/L琼脂糖凝胶电泳进行质检(28S rRNA/18S rRNA>1.0),样品质检合格。用干冰保护并送往杭州联川生物技术股份有限公司,然后按照Illumina公司的测序标准进行测序。由于测序存在一定错误,本研究以测序深度大于100为阈值避免假阳性SNP的产生,使用SOAPsnp软件分析SNP位点信息。

1.3 GO(gene ontology)和KOG功能分析

把SNP所在的基因映射到罗氏沼虾GO注释文件中,并在WEGO(http://wego.genomics..org.cn/)中对这些基因进行GO功能分类统计。以KOG数据库为参考,对这些基因的功能进行分析。

1.4 挖掘免疫相关SNP

根据测序得到的整个罗氏沼虾肝胰腺转录组中的SNP,结合挖掘到的Toll、IMD、JAK/STST和MAPK 4个免疫通路中的免疫因子,进行免疫相关SNP的挖掘。

2 结果与分析

2.1 样品质量检测

采用Trizol方法提取肝胰腺组织的总RNA,通过琼脂糖凝胶电泳检测,图1显示,5S、18S和28S RNA条带清晰,28S RNA条带亮度是18S RNA条带亮度的2倍关系,紫外分光光度D260 nm/D280 nm测定结果为1.9~2.0,说明RNA提取的质量较好。

2.2 SNP分子标记筛选

通过SOAPsnp软件分析, 发现潜在SNP位点37 589个,其中转换25 188个,颠换12 401个,转换的SNP位点数约占2/3,明显高于颠换。对不同转录本中SNP数量进行统计发现,大部分转录本中的SNP数量少于6个(图2)。

2.3 含SNP位点Unigene(SNP-Unigenes)的功能注释

将得到注释的7 062个Unigenes与GO、KOG数据库中的蛋白序列进行BLAST比对,取阈值e≤10-10,分别筛选到 2 451 个有GO注释和2 458个有KOG注释的SNP标记。

GO是适用于各物种,且不断更新描述和限定基因与蛋白功能的语言词汇标准,SNP-Unigenes的GO分类结果见图3。通过软件对获得GO注释的基因从分子生物学功能(molecular function)、生物学途径(biological process)和细胞组件(cellar component)3方面进行聚类分析。

KOG是真核生物直系同源蛋白簇(clusters of orthologous groups for eukaryotic complete genomes),共分为24类。结果显示,在一般功能预测(general function prediction only,479个),翻译后的修饰、蛋白周转、分子伴侣(posttranslational modification,protein turnover,chaperones,303个)和信号转导机制(signal transduction mechanisms,193个)3个方面聚集的最多,细胞运动(cell motility,3个)最少(表1和图4)。

2.4 免疫相关SNP筛选

对于Toll、IMD、JAK/STST和MAPK 4个主要免疫通路,本研究通过筛选得到145个免疫关键基因,并挖掘到129个SNP位点(表2)。其中4个通路中这145个基因相关免疫SNP数分别为1、10、27、91个。这些SNP位于5′区、CDS区(蛋白质编码区)和3′区的SNP所占比例分别为6.98%、5349%、3953%,位于CDS区的SNP数量超过总数量的1/2。

3 讨论

本研究发现潜在SNP位点37 589个,SNP发生频率是 1 152 bp 中就有1个SNP,与Jung等对罗氏沼虾的表达序列标签(EST)分析得出的945 bp 1个SNP[9]和人基因组中1 kb 1个SNP[10]大致同等水平,较低于中华绒螯蟹的189 bp 1个SNP[11]和大西洋鲑的641 bp 1个SNP[12]。这些SNP的发现丰富了水产甲壳动物的分子标记的数据,为促进分子标记挖掘和育种提供了分子材料。尤其是针对4个免疫通路145个免疫关键基因中挖掘到129个SNP位点, 经过后续的试验验证和实践应用,这些免疫候选标记将可能为虾类培育出具有强抗病性的新品种。

参考文献:

[1]Holthuis L B. An annotated catalogue of species of interest to fisheries[J]. FAO Fisheries Synopsis,1980,125(1):103.

[2]马 劳. 罗氏沼虾养殖手册[M]. 罗马:联合国粮食及农业组织,2005:1-11.

[3]Sahul H S,Yoganandhan K,Sri W J,et al. Experimental transmission and tissue tropism of Macrobrachium rosenbergii nodavirus(MrNV)and its associated extra small virus(XSV)[J]. Diseases of Aquatic Organisms,2004,62(3):191.

[4]Bonami J R,Shi Z,Qian D,et al. White tail disease of the giant freshwater prawn,Macrobrachium rosenbergii:separation of the associated virions and characterization of Mr NV as a new type of nodavirus[J]. Journal of Fish Diseases,2005,28(1):23-31.

[5]唐立群,肖層林,王伟平. SNP分子标记的研究及其应用进展[J]. 中国农学通报,2012,28(12):154-158.

[6]谭 新,童金苟. SNPs及其在水产动物遗传学与育种学研究中的应用[J]. 水生生物学报,2011,35(2):348-354.

[7]Vignal A,Milan D,Sancristobal M,et al. A review on SNP and other types of molecular markers and their use in animal genetics[J]. Genetics Selection Evolution,2002,34(3):275-305.

[8]Steiner T,McGarrity G J,Phillips D M. Cultivation and partial characterization of spiroplasmas in cell cultures[J]. Infection & Immunity,1982,35(1):296.

[9]Jung H,Lyons R E,Dinh H,et al. Transcriptomics of a giant freshwater prawn (Macrobrachium rosenbergii):de novo assembly,annotation and marker discovery[J]. PLoS One,2011,6(12):e27938.

[10]Frazer K A,Ballinger D G,Cox D R,et al. A second generation human haplotype map of over 3.1 million SNPs[J]. Nature,2007,449(7164):851-861.

[11]李希红. 中华绒螯蟹(Eriocheir sinensis)高通量转录组解析及免疫通路关键基因筛选[D]. 青岛:中国科学院大学,2014.

[12]Hayes B,Laerdahl J K,Lien S,et al. An extensive resource of single nucleotide polymorphism markers associated with Atlantic salmon (Salmo salar) expressed sequences[J]. Aquaculture,2007,265(1/2/3/4):82-90.敬永杰,管卫兵. 养殖克氏原螯虾不同季节稳定同位素特征[J]. 江苏农业科学,2019,47(4):149-152.

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