李　艳，董振玲，李　佳，牟德华，*

（1.河北科技大学生物科学与工程学院，河北 石家庄 050018；2.河北省发酵工程技术研究中心，河北 石家庄 050018；3.河北一然生物科技有限公司，河北 石家庄 050800）

羊羔美酒大曲中乳酸菌多样性及分子鉴定

李艳1，2，董振玲1，3，李佳1，牟德华1，*

（1.河北科技大学生物科学与工程学院，河北 石家庄 050018；2.河北省发酵工程技术研究中心，河北 石家庄 050018；3.河北一然生物科技有限公司，河北 石家庄 050800）

目的：分离和鉴定羊羔美酒大曲中的乳酸菌，探寻其菌群多样性，为酿酒工艺条件改进提供参考。方法：将酒曲进行梯度稀释、富集培养、平板画线等分离纯化，获取乳酸菌单菌落。采用菌落特征和个体形态特征结合的方法进行乳酸菌形态鉴定。乳酸菌的分子鉴定采用重复序列聚合酶链式反应（repetitive sequence-based polymerase chain reaction，Rep-PCR）技术和16S rDNA序列分析法。结果：从羊羔美酒大曲中共得到65 株乳酸菌，形态学分为9 类。用Rep-PCR技术在75%的相似性上将其区分为5 类，经基因序列分析，鉴定为分属于4 个属的乳酸菌，分别为：片球菌属（Pediococcus）、明串珠菌属（Leuconostoc）、乳杆菌属（Lactobacillus）、肠球菌属（Enterococcus）。结论：传统微生物分离技术与现代分子鉴定技术相结合，可快速准确鉴定出羊羔美酒大曲中乳酸菌的菌群组成和多样性。

羊羔美酒大曲；乳酸菌；分子鉴定；重复序列聚合酶链式反应；16S rDNA序列分析

乳酸菌指利用可发酵性糖产生乳酸的一类革兰氏阳性细菌的通称。在分类学上，乳酸菌这个名称是非正式、非规范的［1］。乳酸菌与中国传统酿造业息息相关。黄酒发酵属糖化和发酵并行的过程，以多品种、高密度酵母菌和乳酸菌协同发酵产生酒精、乳酸和多种风味物质［2］。乳酸菌对酿酒过程及最终产品的风味形成有突出贡献，发酵初期产生乳酸，使发酵环境的pH值下降，可抑制有害菌繁殖；发酵中后期产生的乳酸可与酵母代谢产生的乙醇作用，形成乳酸乙酯以增强酒的浓醇感和酒香气的柔和性［3］。酒曲是发酵的动力，酒曲微生物菌群的组成是酿酒的源泉，鉴定酒曲中的乳酸菌对酒曲应用和酿酒工艺改进极有意义。

目前，越来越多的分子生物学方法，如扩增片段长度多态技术、变性梯度凝胶电泳/温度梯度凝胶电泳、16S～23S rDNA间区、16S rDNA序列分析、重复序列聚合酶链式反应（repetitive sequence-based polymerase chain reaction，Rep-PCR）技术等［4-10］已应用于乳酸菌的分类鉴定。其中Rep-PCR是采用特定引物对细菌基因组DNA的重复序列进行扩增，经电泳技术分离后分析其多态性。该技术可以在亚种和菌株水平上对菌种进行快速而准确的分类和鉴定，并且有操作简便、重复性好、分辨率高等优势。

羊羔美酒是一种北方特色肉酿型黄酒，河北省名酒，利用大曲为糖化剂、发酵剂和生香剂［11］。本实验检测羊羔酒大曲中的乳酸菌，可以探明羊羔美酒的发酵驱动力，从一个侧面解密酒的风味特征，对进一步优化酿酒工艺，筛选有益于酒类酿造和形成特色风味的乳酸菌奠定基础。

1　材料与方法

1.1材料与培养基

羊羔美酒大曲由河北味道府酒业有限责任公司提供。

MRS固体培养基［12］（g/L）：蛋白胨10.0、牛肉膏10.0、酵母浸粉5.0、柠檬酸氢二铵2.0、葡萄糖20.0、乙酸钠2.0、K2HPO42.0、MgSO40.58、MnSO40.25、琼脂18.0、CaCO310，吐温-80 1.0 mL蒸馏水配制，pH 6.0，121 ℃灭菌20 min。

MRS液体培养基：MRS固体培养基中不添加碳酸钙、中性红和琼脂。

1.2试剂与仪器

引物：27F：5'-AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3'，1495R：5'-CTA CGG CTA CCT TGT TAC GA-3'，（GTG）5：5'-GTG GTG GTG GTG GTG-3'，BOXAIR：5'-CTA CGG CAA GGC GAC GCT GACG-3'；10×PCR Buffer、dNTP、rTaq酶均购自生工生物工程（上海）股份有限公司。

PCR仪、凝胶成像分析仪 美国Bio-Rad公司；琼脂糖水平板电泳仪 北京六一公司。

1.3方法

1.3.1酒曲中乳酸菌的分离

样品处理：取成品羊羔美酒大曲，分别用无菌刀在酒曲外表面、中间和内部取样各1.0 g，混合研磨成粉。取1 g加入100 mL无菌水，置于摇床上150 r/min摇30 min，静止，取其上清液进行系列10 倍梯度稀释［11-13］。选适宜稀释梯度的稀释液0.2 mL倾注法接种于3 个平行MRS培养基中，37 ℃恒温培养48 h。对在MRS培养基上可以产生透明圈并长势良好的菌落进行计数。再选取产生透明圈及在厌氧条件生长的菌落接种于液体MRS培养基（含20%甘油），-20 ℃条件下保藏。

乳酸菌的分离：分别选用大米、糯米、黍米为酒曲活化基质，进行大曲微生物的富集，30 ℃培养5 d。取培养基质1 g，加100 mL无菌水，打浆，取5 mL浆液进行系列10 倍梯度稀释，选3 个合适的稀释度0.2 mL进行3 个平行平板的涂布分离培养。

1.3.2乳酸菌的初步鉴定和形态聚类

将保存的菌株进行活化，接种于琼脂培养基，划线分离，上层倾注MRS培养基，37 ℃培养48 h，挑取单菌落连续纯化2 次。将已纯化的单菌株进行革兰氏染色和过氧化氢实验，将革兰氏阳性且过氧化氢实验阴性的菌确定为乳酸菌［14］。将已确定为乳酸菌的菌株采用平板划线法接种于MRS培养基，37 ℃培养5 d后根据其菌落形态及个体形态进行分类。

1.3.3乳酸菌的分子鉴定

1.3.3.1基因组DNA的提取

实验菌株接种于MRS液体培养基中，37 ℃培养48 h，获得足够量的菌体。取1.5 mL培养液12 000 r/min离心10 min，弃去上清液。加20 mg/mL的溶菌酶50 μL，37 ℃处理1 h。向每管加入200 μL裂解缓冲液（4 mmol/L Tris-HCl，pH 8.0，20 mmol/L乙酸钠，1 mmol/L乙二胺四乙酸（ethylene diamine tetraacetic acid，EDTA），1%十二烷基硫酸钠（sodium dodecyl sulfate，SDS）），混合均匀。加入10 μL蛋白酶K（10 mg/mL），55 ℃处理30 min，向每管加入66 μL饱和NaCl溶液，充分混合后，12 000 r/min离心10 min，除去蛋白质复合物及细胞壁等残渣。取离心后上清液，加入等体积的Tris饱和酚，14 000 r/min离心5 min，取上清液，用等体积的氯仿异戊醇溶液抽提2 次，取上清液，用预冷1 倍体积的异丙醇沉淀DNA，15 000 r/min离心10 min，弃去上清液。用400 μL 70%的乙醇洗涤沉淀两次。室温干燥后，用50 μL无菌双蒸水溶解DNA［15-17］。检测DNA的纯度与浓度，将DNA稀释至质量浓度20～50 ng/μL，-20 ℃保存备用［18］。

1.3.3.2Rep-PCR分析

（GTG）5 PCR反应体系：10×PCR Buffer 2.5 μL，MgCl2（25 mmol/L）3 μL，（GTG）5（0.4 μmol/L）1 μL，模板DNA（20～50 ng）1 μL，Taq酶（0.5 U/L）0.2 μL，加灭菌双蒸水补足 25 μL。PCR反应程序：预变性95 ℃ 7 min，94 ℃ 1 min，40 ℃ 1 min，65 ℃ 8 min，35 个循环，最后65 ℃ 20 min［19-21］。

BOX AIR PCR反应体系：10×PCR Buffer 2.5 μL，MgCl2（25 mmol/L）3 μL，BOX AIR（0.4 μmol/L）1 μL，模板DNA（20～50 ng）1 μL，Taq酶（0.5 U/L）0.5 μL，加灭菌双蒸水补足25 μL。PCR反应程序：95 ℃预变性7 min；94 ℃ 1 min，53 ℃ 1 min，65 ℃ 8 min，35 个循环；最后65 ℃ 16 min［22-25］。

PCR产物的检测：吸取8 μL PCR产物，通过1.5%琼脂糖凝胶电泳检测，90 V电压140 min，经过EB染色15 min后，利用凝胶成像系统成像［26］。

1.3.3.316S rDNA序列分析

扩增乳酸菌16S rDNA使用细菌通用引物27F与1495R。PCR反应体系：Buffer 10 μL，Taq酶0.4 μL，dNTP 1 μL，引物2 μL，DNA 2 μL，双蒸水32.6 μL。PCR扩增条件：94 ℃预变性5 min；94 ℃变性1 min，58 ℃退火1 min，72 ℃延伸2 min，30 个循环；72 ℃末端延伸10 min。将PCR产物利用2%琼脂糖凝胶电泳检测片段长度［27］。

将样品菌株的16S rDNA PCR产物送至生工生物工程（上海）股份有限公司，委托其进行序列测定。

2　结果与分析

2.1乳酸菌的分离与形态聚类

表1　MRS培养基上（培养5 d）乳酸菌落的形态描述Table1　Morphological characteristics of lactic acid bacteria on MRS medium （incubation for 5 days）

从羊羔美酒大曲中共分离得到168 株可以产生透明圈的单菌株，对单菌株进行革兰氏染色和过氧化氢实验后，将65 株过氧化氢实验显示阴性且革兰氏阳性的菌株初步确定为乳酸菌，其中杆菌18 株（27.7%），球菌47 株（72.3%）。根据乳酸菌在MRS培养基上菌落形态和显微镜下细胞形态的不同进行聚类，可将杆菌分为3 类，其中形态2数量最多，共12 株，占乳杆菌数量的66.7%；球菌分为6 类，其中形态4与形态9数量较多，各有13 株和12 株，分别占乳球菌总数量的27.7%与25.5%，形态聚类结果见表1。因此，在羊羔美酒大曲中，优势乳酸菌群为形态2的乳杆菌和形态4与9的乳球菌。

2.2Rep-PCR技术鉴定乳酸菌

为了选择适合大曲中乳酸菌多样性研究的引物，本研究选取了2 种在乳酸菌Rep-PCR技术报道中使用较多的引 物（GTG）5与BOXAIR。用这两种引物对9 种形态的乳酸菌代表菌株进行基因扩增。由图1可知，用（GTG）5和BOXAIR 分别作为引物的 PCR 产物电泳出现多条带谱，其分子质量大小范围在0.25～0.5 kb 之间，菌株之间的差异能够明显地被区分开来。从（GTG）5扩增结果可知，各菌株均有良好的多态性，扩增条带数目均在9～15 条；而BOXA1R引物扩增结果并不是很理想，泳道5～10的条带均少于8 条，图谱多态性并不理想。因此，（GTG）5在这些乳酸菌基因组中的分布比BOXA1R更为多样，且两者的结果对菌株的分群有差异，暗示这两种短重复序列在基因中的分布也不同［28］。

图1　（ GTG）5（a）和BOXA1R（b）扩增条带的比较Fig.1　Comparison of fingerprints obtained with （GTG） 5 （a） and BOXA1R （b）

以（GTG）5扩增图谱进行多态性分析，使用NTSYSpc2.0软件进行数据处理，采用平均连锁法（unweighted pair-group method with arithmetic means，UPGMA）绘出聚类树状图，并进行菌株的分群，结果见图2。

图2　采用平均连锁法构建的Rep-PCR结果树状图Fig.2　UPGMA dendrogram generated from Rep-PCR fingerprints

由图2可知，在75%相似性上进行分群，（GTG）5可以将9 种不同类型的乳酸菌区分为5 个群，其中群Ⅱ是最大的一个群，包含了形态4、5、6、7共4 种形态；群Ⅲ包含形态2、3两种形态；其余形态1、形态8、形态9分别属于群Ⅰ、Ⅳ和Ⅴ。使用Rep-PCR技术可以快速地将不同菌株在基因型上进行聚类分析。

2.316S rDNA序列分析法鉴定乳酸菌

为了进一步验证Rep-PCR技术的可靠性，将实验菌株进行16S rDNA测序，将所得序列结果登陆GenBank数据库，进行BLAST（http： //www. ncbi. nlm. nih. gov/blast/ Blast. cgi）相似性比对，以相似度大于99%确定其属种，测序结果见表2。

表2　乳酸菌16S rDNA序列分析结果Table2　16S rDNA sequence analysis of lactic acid bacteria

在GenBank核酸序列数据库中下载相关菌株16S rDNA序列，与已测序菌株的序列放在一起，使用Clustal X软件进行序列比对；利用MEGA4生物学软件的Neighbor-Joining连接法构建系统发育树，并进行1 000 次Bootstrap检验。构建的系统发育树如图3所示。

结合图2与图3进行分析可知，Rep-PCR结果树状图与16S rDNA序列系统发育树有较好的相关性。因此，（GTG）5-PCR指纹分析技术能够反映出不同菌株的基因组间存在的差异，可以作为鉴别菌种的手段之一［26-28］。针对羊羔美酒大曲中大量乳酸菌的基因型差异性，在后续研究中，可以建立相关Rep-PCR指纹图谱数据库，结合16S rDNA序列测序技术，便可实时了解羊羔美酒发酵过程中优势乳酸菌的演变规律，为发酵工艺优化与控制奠定基础。本实验为羊羔美酒大曲中乳酸菌的Rep-PCR指纹图谱数据库建立奠定了基础。

图3　基于16S rDNA序列和Neighbor-Joining法构建的系统发育树Fig.3　Phylogenetic tree based on 5.8S-ITS region sequences and Neighbor-Jointing method

另外，从以上分子鉴定结果可以看出，羊羔美酒大曲中乳酸菌种类非常丰富，存在着乳杆菌属、片球菌属、明串珠菌属和肠球菌属，其中片球菌属和乳杆菌属所占比重较大。片球菌属、肠球菌属和明串珠菌属都有糖化作用，也可分解蛋白质、产生乳酸、降低pH值。羊羔美酒大曲中丰富的球菌对保证其酿造过程顺利进行起着至关重要的作用。乳杆菌在羊羔酒发酵过程中产生乳酸的同时也会产生不同类型的肽聚糖，而肽聚糖可以成为羊羔酒的风味成分之一。另外，乳酸杆菌也可以利用霉菌等微生物代谢生成的朊、胨和多肽类物质分解成氨基酸，推测这些乳酸杆菌与羊羔美酒独特的香气和富含的22 种氨基酸有着密切联系。实验为后续研究各种乳酸菌单菌株特性、优势菌株的分析、及其在羊羔美酒发酵过程中的作用机制奠定了基础，进而为改进酿酒工艺条件提供参考。

3　结 论

本实验从羊羔美酒大曲中共分离乳酸菌65 株，形态区分为9 类，使用Rep-PCR技术将其区分为5 类，经16S rDNA基因序列分析，将其鉴定为分属于片球菌属、明串珠菌属、乳杆菌属、肠球菌属4 个属的乳酸菌。研究结果反映了羊羔美酒大曲中乳酸菌的多样性，为优化这一我国北方特色地方名酒的酿造工艺、改进传统的配料和研究产品的风味物质特征奠定了基础。

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Diversity and Molecular Biological Identification of Lactic Acid Bacteria from Yanggaomeijiu Daqu， a Traditional Chinese Liquor Fermentation Starter

LI Yan1，2， DONG Zhenling1，3， LI Jia1， MOU Dehua1，*
（1. College of Bioscience and Bioengineering， Hebei University of Science and Technology， Shijiazhuang 050018， China；2. R&D Center for Fermentation Engineering of Hebei Province， Shijiazhuang 050018， China；3. Hebei Inatural Biological Technology Co. Ltd.， Shijiazhuang 050800， China）

Purpose： The aim of this work was to isolate and identify lactic acid bacteria （LAB） in Yanggaomeijiu Daqu，a fermentation starter for the production of Chinese liquor Yanggaomeijiu， and to explore the diversity of LAB in Yanggaomeijiu Daqu. Methods： Individual bacterial colonies of LAB from Yanggaomeijiu Daqu were obtained through isolation and purification steps including gradient dilution， enrichment， cultivation， and plate streaking. Morphological identification of LAB isolates was performed based on colony and individual morphological characteristics and further molecular identification was carried out by repetitive sequence-based polymerase chain reaction （Rep-PCR） and 16S rDNA sequence analysis. Res ults： A total of 65 LAB isolates were obtained from Yanggaomeijiu Daqu， which could be assigned into 9 different groups by conventional microbiological anal ysis， differentiated into five types by Rep-PCR at a 75% similarity， and belonged to 4 genera including Pediococcus，Leuconostoc， Lactobacillus and Enterococcus by gene sequencing. Conclusion： The diversity and composition of LAB in Yanggaomeijiu Daqu can be identified quickly and accurately by the combination of traditional microbial separation methods and modern molecular biological identification techniques.

Yanggaomeijiu； lactic acid bacteria； molecular biological identification； repetitive sequence-based polymerase chain reaction （Rep-PCR）； 16S rDNA sequence analysis

TS261.1

A

1002-6630（2015）13-0167-05

10.7506/spkx1002-6630-201513031

2014-09-19

河北省石家庄市科技支撑计划课题（101171271A；10117901A）；河北省自然科学基金项目（C2011208028）

李艳（1958—），女，教授，本科，研究方向为饮料酒酿造、酿酒微生物。E-mail：lymdh5885@163.com

牟德华（1960—），男，教授，本科，研究方向为农产品加工。E-mail：dh_mou@163.com