陈超然　温建新

摘 要：选取威海某地区的两个水貂场作为抽样样本，取得疑似阿留申病毒致死的病死貂和2 000多个水貂的血液样品，检测该地区水貂阿留申病的阳性率。对病死貂的视诊和病理剖检，对病貂做出临床诊断。将血液样本进行碘凝集试验和对流免疫电泳试验，完成该地区水貂阿留申病的检测调查。结果显示，威海某地区阿留申病的阳性检出率为70%以上，表明威海地区水貂阿留申病的流行情况非常严重。

关键词：水貂；阿留申病；诊断；调查

中图分类号：S858.92 文献标识码：A DOI编码：10.3969/j.issn.1006-6500.2014.04.006

水貂阿留申病是由阿留申病毒引起的一种慢性病毒病，又被称为浆细胞增多症。该病毒属细小病毒科 [1]，不同年龄阶段的水貂患阿留申病可表现出不同的病症，成年水貂感染ADV后，表现出典型的水貂阿留申病，以体内浆细胞增多，产生大量的r球蛋白，持续性的毒血症及由免疫复合物沉积引发的严重肾小球炎等为主要症状[2]。而新生幼貂感染该病后病毒大量繁殖于病貂体内的肺泡II型细胞，临床症状会出现急性致死性的间质性肺炎。不同的急、慢病症在有些水貂中的表现轻微或某些水貂感染ADV后不出现明显感染症状的情况，也有相关报道[3] 。

水貂阿留申病在很多养貂国家广泛流行，我国也是其中之一，它是对养貂业发展产生阻碍的主要传染病之一[4]。自1946年发现阿留申病至今，国内外时常会有该病的研究报道，从1982年开始，我国从美国引进标准黑貂，从那时起阿留申病就普遍存在于全国的各个貂场，在某些严重地区阿留申的感染率甚至达到80%[5]。由于该病为慢性传染病，不能引起养殖户的足够重视，对水貂的检疫力度不够，对阳性貂没有及时的淘汰，致使病毒通过体液和排泄物传到体外，污染了貂场的环境，导致貂群整体的感染率逐年升高，从而引起该病大面积的流行。本病主要传染源是病貂和潜伏期病貂。当水貂饲养场从病貂场引进潜伏带毒的病貂时，常在引进后第一年发病和死亡。在2～3年内貂场中仍有该病缓慢流行，感染率可达25%～40%[6]。

该病会造成母貂空怀、流产、不发情、弱胎；公貂配种能力下降，精子活力降低，给养殖单位造成严重的经济损失。据不完全统计，水貂阿留申病所造成的损失占水貂其他疾病总损失的50%以上[7]。目前对阿留申病还没有根本上的治疗药物，只有通过检测预防来控制阿留申病的传播，笔者对威海地区的两个貂场进行了调查。

1 材料和方法

1.1 试验材料

水貂血液样本2 000个（威海荣成某貂场）；病死貂数只（威海荣成某貂场）。

1.2 试验仪器

外科剪、镊子4套；离心管；塑料泡沫；一次性手套；培养皿若干；50～200 μL的微量移液器；高速离心机（上海安亭科学仪器厂TGL—16G）；灭菌的Tip枪头若干；载玻片；DYY-6C型电泳仪（北京市六一仪器厂）；对流电泳槽；酒精灯；六联电子调温万用电炉（龙口先科仪器公司）；胶头滴管；烧杯；玻璃棒；打孔器。

1.3 主要试剂

酒精棉、碘酊棉；PBS缓冲液；碘试剂；巴比妥缓冲液；水貂阿留申病毒抗原和标准阳性血清（吉林特研生物技术有限责任公司）。

1.4 试验方法

1.4.1 水貂阿留申病的临床诊断

（1）病貂的临床症状观察

直接观察病貂的精神状态、营养状况、姿态、步态，病貂被毛的光泽度，有无局部脱毛，皮肤颜色，排泄物的性状；向养殖户询问病貂最近的饮食状况，异常变化。

（2）病貂的剖检变化

将病死貂尸体放在解剖盘内，使其胸腔部充分暴露。用酒精消毒过的解剖打开病貂的腹腔，对腹腔内的肠、肝脏、脾脏和肾脏逐一进行检查。

1.4.2 水貂的血清学检测

（1）水貂血样的采集

按文献报道采集水貂血液[8]。在运输水貂血样的过程中，保证离心管不要有太大的晃动，使其处于静置状态，使血清自然分层。

（2）碘凝集试验

取一个大的培养皿，用酒精棉球擦拭进行消毒，然后干燥，取一张田字格放在培养皿下，向每一个方格内加入一滴刚配置好的碘液，用移液管逐一吸取30 μL血清加入碘液中，用枪头充分摇匀混合，1～2 min后判定试验结果，对2 000个血样的试验结果进行统计。

（3）对流免疫电泳试验

①琼脂凝胶板的制备。琼脂糖粉1.0 g，溶解于刚制备好的100 mL巴比妥缓冲液中，加热至琼脂糖溶解完全，静置一段时间，以便使温度降低至60 ℃左右。然后将琼脂糖溶液用胶头滴管滴注在水平放置的干净无油的载玻片上，琼脂厚度约为3 mm。

②打孔。将凝胶板放在打孔模板上，每孔直径为3 mm，孔间距为3 mm。将打好孔的凝胶板进行封底，一般封底温度在50 ℃左右。

③加样。将被检血清按照编号顺序用移液管从左向右加入到正极端孔内，负极端孔加入抗原，以加满孔但不外溢为准。每块凝胶板均须设标准阴性和阳性血清作对照。

④电泳。将电泳槽两侧加入巴比妥缓冲液，接通电源开始电泳，调节电压在90 V左右，电泳30～60 min，然后关闭电源，取出凝胶板，在阳光下或日光灯下，以黑色背景观察沉淀线，进行结果判定。

2 结果与分析

2.1 病貂的临床症状观察结果

观察可见其精神高度沉郁，嗜睡，渴欲猛增，体温高达41.7 ℃，抓捕时齿龈易出血，贫血，痉挛，步态蹒跚，共济失调，病貂进行性消瘦，生长滞缓，双眼无神，被毛暗淡无光，排煤焦样粪便。

2.2 病貂的剖检变化结果

可见肠道内有煤焦油样粪便和腥味稀粪，腹腔内有出血，肾脏体积增大至正常时的两倍左右，呈淡黄色，有点状出血，被膜容易剥离掉，表面出现黄白色小病灶；脾脏比正常时肿大约3倍，呈红褐色，被膜紧张，富有弹性，边缘锐利；肝脏肿大，表面颜色呈灰黄色。

2.3 碘凝集试验结果

（1）碘凝集的试验结果如下图1所示。

结果判定依据：当向血清中加入碘剂后，混合物还是透明的，呈碘液原来的本色时，判定为阴性（—）；当析出的絮状物量少且小的时候则判定为阳性（++和+）；当混合物中析出大的暗褐色絮状物时判定为强阳性（++++和+++）。

（2） 对A场的1 651只水貂的血清样本进行碘凝集试验后，统计结果如表1。

由表1中可以看出，A场的不同舍的发病情况是不同的，其中6号舍的发病情况最为严重，+++以上的阳性貂占到该舍的31.2%；8号舍的发病情况是调查的5个舍中最轻的，但+++以上的阳性貂也占到了该舍的11.9%。通过该方法检出+以上的阳性貂是1 067只，其阳性率为64.63%；+++以上的阳性貂是333只，其阳性率为20.17%，阴性貂为584只，阴性率为35.37%，由此可见，A场的阿留申病发病情况还是较为严重的。

对B家的513只水貂的血清样本进行碘凝集试验后，统计结果如表2。

由表2可以看到，B家公貂总共101只，其中阳性公貂92只，占公貂总数的92%，阴性公貂占公貂总数的8.00%；母貂总共412只，其中阳性母貂360只，其阳性率为87.38%，+++以上的占母貂总数的39.57%，阴性母貂52只，占母貂总数的12.62%，由此可见，公貂感染阿留申病的比重要大于母貂，更容易感染阿留申病；B家总共有513只水貂，其中，+++以上阳性貂占到了41.91%，将近一半，说明了B家貂场阿留申病的感染情况要比A场更严重。由表3我们可以看到荣成该地区水貂阿留申的阳性率为71.24%。

2.4 对流免疫电泳验证试验结果

由于所采的血样过多，我们只抽取两貂场中的50个血样进行对流免疫电泳试验，其中碘凝集试验显阳性的为20份，阴性为15。阳性个数为19份，阳性符合率为95%；阴性个数为14份， 阴性符合率为93.3%。结果证明，碘凝集试验结果是准确和可靠的。

3 讨 论

3.1 水貂阿留申病的流行病学

该病对所有品系的水貂都能感染。它通过不同方式和途径传播，如病貂污染过的饲料、饮水、食具等。不同年龄和性别的水貂均可感染。本病具有明显的季节性，在秋冬季节的发病率和死亡率大大增加，因为肾脏高度损害的病貂，会表现出渴欲增高，而在秋冬季节由于冰冻，其饮水常常得不到满足，致使原来就衰竭的病貂，在这样急剧恶劣的条件下，发生大批死亡，中国农业科学院通过对国内大、中型水貂养殖场进行调查研究表明，国内水貂养殖场水貂感染率为40%～70%[9]。本试验的结果显示荣成地区的感染率在70%左右，远高于国内的平均水平，说明荣成地区阿留申的感染情况还是非常严重的。

3.2 碘凝集试验与对流免疫试验的优缺点

1962年，Henson等[10]首先将该法应用于对阿留申病毒的检测，碘凝集试验最大的优点在于简便易行，它所要求的试验条件非常低，一般的水貂养殖户都有能力完成这个试验，而且具有依据它淘汰阳性带病貂的能力，能够达到控制蔓延和减少损失的目的，但缺点是检测是非特异性的，有些同样可以引起血清蛋白发生变化的疾病，如脓肿、结核、甚至感冒等病状也均可造成检测结果显阳性，因而不能达到最终扑灭的目的。1972—1974年，Cho和Ingnam[11]首先在加拿大应用对流免疫电泳检测水貂阿留申病，而对流免疫试验在诊断水貂阿留申病中不论是检出率还是特异性和敏感性方面都要高于碘凝集试验，阳性检出率的准确性甚至可以达到100%。缺点是要求的试验条件较高，一般的养殖户不能利用这个方法对水貂进行检测，所以在实际的生产应用中不如碘凝集试验普及。本试验通过这两种方法对荣成地区阿留申病的检测结果是一致的，所以试验结果是可靠准确的。

3.3 关于阿留申病防治的讨论

（1）首先应该加强对饲养管理的重视程度，必须保证饲料的优质、新鲜和全价，这样可以有效提高水貂自身的机体抵抗力，从根本上将水貂发病控制在较低水平。

（2）由于病貂的尿液、唾液和粪便都可能含有阿留申病毒，所以对兽场内的用具、食具笼舍和地面都要定期进行消毒。最有效的消毒方法是用喷灯火焰或蒸气处理预先清扫过的笼舍表面。在化学药物中应用5%福尔马林溶液消毒金属结构，用2%的硷溶液或漂白粉处理兽场地面[12]。

（3）病貂和潜伏期带病貂的病毒长期存在于病貂体内，可以建立定期检疫和淘汰阳性貂制度。可以每年检疫2次，第一次在配种开始前，通常在1—2月间进行；第二次在选留种期间，一般在9—10月间进行。所以每年可通过本试验的碘凝集试验或对流免疫电泳两种诊断方法进行检疫，先检查成年水貂，后检查幼龄水貂，对幼龄水貂只有其双亲都是阴性反应者方可留做种用。处杀阳性貂，逐年减少发病率，经过3～5年时间，可以使貂场的阳性率控制在5%以内[13]。

参考文献：

[1] 吴清民.兽医传染病学[M].北京：中国农业大学出版社，2001：310-314.

[2] 徐凤宇，王树志.水貂阿留申病概述[J].经济动物学报，2006，10（2）：106-109.

[3] 黄永凯，周煜，孔德军.水貂阿留申病[J].云南畜牧兽医，2006（5）：41.

[4] 张丽华.貂阿留申病发病机理与防治[J].吉林畜牧兽医，2011（8）：32.

[5] Ellis L C. 阿留申病的现状及发展趋势[M].董克舒，王立群，陈启仁，等译.北京：科学出版社，1993，16（4）：517.

[6] Basrur P K， Gray D P， Karstad L.Alentian disease（plasmacytosis） of mink. Propagation of virus in mink tissue culture[J]. Can J Comp Med vet Sci， 1963， 27（12）：301-306.

[7] 白文彬，于康震.动物传染病诊断学[M].北京：中国农业出版社，2002：901-903.

[8] 李振荣，吴斌，胡传伟，等.进境水貂阿留申病关键检疫技术的研究[J].中国科学研上海研究所，2000，15（6）：103.

[9] 毕世坤，薛强.水貂阿留申病的检测技术总结[J].山东畜牧兽医，2005（3）：42.

[10] Henson J B，Gorham J R，Leader R W，et al. Experimental hypergammaglobulinemia in mink[J]. Journal of experimental medicine， 1962， 116（3）：357-364.

[11] Cho H J， Ingram D G. Antigen and antibody in Aleutian disease in mink.The Reaction of Antibody with the aleutian disease agent using immunodiffusion and immunoelectroosmophoresis[J].Can J comp Med，1973，37（3）：217-223.

[12] 梁春彩.人工养殖水貂常见病及其防治[J].畜牧兽医科技信息，2005（8）：13.

[13] 刘庆仁，李秀峰，宋旭春.水貂阿留申病的防治经验[J]北京：中国农业出版社，1988，（14）：125.

2.3 碘凝集试验结果

（1）碘凝集的试验结果如下图1所示。

结果判定依据：当向血清中加入碘剂后，混合物还是透明的，呈碘液原来的本色时，判定为阴性（—）；当析出的絮状物量少且小的时候则判定为阳性（++和+）；当混合物中析出大的暗褐色絮状物时判定为强阳性（++++和+++）。

（2） 对A场的1 651只水貂的血清样本进行碘凝集试验后，统计结果如表1。

由表1中可以看出，A场的不同舍的发病情况是不同的，其中6号舍的发病情况最为严重，+++以上的阳性貂占到该舍的31.2%；8号舍的发病情况是调查的5个舍中最轻的，但+++以上的阳性貂也占到了该舍的11.9%。通过该方法检出+以上的阳性貂是1 067只，其阳性率为64.63%；+++以上的阳性貂是333只，其阳性率为20.17%，阴性貂为584只，阴性率为35.37%，由此可见，A场的阿留申病发病情况还是较为严重的。

对B家的513只水貂的血清样本进行碘凝集试验后，统计结果如表2。

由表2可以看到，B家公貂总共101只，其中阳性公貂92只，占公貂总数的92%，阴性公貂占公貂总数的8.00%；母貂总共412只，其中阳性母貂360只，其阳性率为87.38%，+++以上的占母貂总数的39.57%，阴性母貂52只，占母貂总数的12.62%，由此可见，公貂感染阿留申病的比重要大于母貂，更容易感染阿留申病；B家总共有513只水貂，其中，+++以上阳性貂占到了41.91%，将近一半，说明了B家貂场阿留申病的感染情况要比A场更严重。由表3我们可以看到荣成该地区水貂阿留申的阳性率为71.24%。

2.4 对流免疫电泳验证试验结果

由于所采的血样过多，我们只抽取两貂场中的50个血样进行对流免疫电泳试验，其中碘凝集试验显阳性的为20份，阴性为15。阳性个数为19份，阳性符合率为95%；阴性个数为14份， 阴性符合率为93.3%。结果证明，碘凝集试验结果是准确和可靠的。

3 讨 论

3.1 水貂阿留申病的流行病学

该病对所有品系的水貂都能感染。它通过不同方式和途径传播，如病貂污染过的饲料、饮水、食具等。不同年龄和性别的水貂均可感染。本病具有明显的季节性，在秋冬季节的发病率和死亡率大大增加，因为肾脏高度损害的病貂，会表现出渴欲增高，而在秋冬季节由于冰冻，其饮水常常得不到满足，致使原来就衰竭的病貂，在这样急剧恶劣的条件下，发生大批死亡，中国农业科学院通过对国内大、中型水貂养殖场进行调查研究表明，国内水貂养殖场水貂感染率为40%～70%[9]。本试验的结果显示荣成地区的感染率在70%左右，远高于国内的平均水平，说明荣成地区阿留申的感染情况还是非常严重的。

3.2 碘凝集试验与对流免疫试验的优缺点

1962年，Henson等[10]首先将该法应用于对阿留申病毒的检测，碘凝集试验最大的优点在于简便易行，它所要求的试验条件非常低，一般的水貂养殖户都有能力完成这个试验，而且具有依据它淘汰阳性带病貂的能力，能够达到控制蔓延和减少损失的目的，但缺点是检测是非特异性的，有些同样可以引起血清蛋白发生变化的疾病，如脓肿、结核、甚至感冒等病状也均可造成检测结果显阳性，因而不能达到最终扑灭的目的。1972—1974年，Cho和Ingnam[11]首先在加拿大应用对流免疫电泳检测水貂阿留申病，而对流免疫试验在诊断水貂阿留申病中不论是检出率还是特异性和敏感性方面都要高于碘凝集试验，阳性检出率的准确性甚至可以达到100%。缺点是要求的试验条件较高，一般的养殖户不能利用这个方法对水貂进行检测，所以在实际的生产应用中不如碘凝集试验普及。本试验通过这两种方法对荣成地区阿留申病的检测结果是一致的，所以试验结果是可靠准确的。

3.3 关于阿留申病防治的讨论

（1）首先应该加强对饲养管理的重视程度，必须保证饲料的优质、新鲜和全价，这样可以有效提高水貂自身的机体抵抗力，从根本上将水貂发病控制在较低水平。

（2）由于病貂的尿液、唾液和粪便都可能含有阿留申病毒，所以对兽场内的用具、食具笼舍和地面都要定期进行消毒。最有效的消毒方法是用喷灯火焰或蒸气处理预先清扫过的笼舍表面。在化学药物中应用5%福尔马林溶液消毒金属结构，用2%的硷溶液或漂白粉处理兽场地面[12]。

（3）病貂和潜伏期带病貂的病毒长期存在于病貂体内，可以建立定期检疫和淘汰阳性貂制度。可以每年检疫2次，第一次在配种开始前，通常在1—2月间进行；第二次在选留种期间，一般在9—10月间进行。所以每年可通过本试验的碘凝集试验或对流免疫电泳两种诊断方法进行检疫，先检查成年水貂，后检查幼龄水貂，对幼龄水貂只有其双亲都是阴性反应者方可留做种用。处杀阳性貂，逐年减少发病率，经过3～5年时间，可以使貂场的阳性率控制在5%以内[13]。

参考文献：

[1] 吴清民.兽医传染病学[M].北京：中国农业大学出版社，2001：310-314.

[2] 徐凤宇，王树志.水貂阿留申病概述[J].经济动物学报，2006，10（2）：106-109.

[3] 黄永凯，周煜，孔德军.水貂阿留申病[J].云南畜牧兽医，2006（5）：41.

[4] 张丽华.貂阿留申病发病机理与防治[J].吉林畜牧兽医，2011（8）：32.

[5] Ellis L C. 阿留申病的现状及发展趋势[M].董克舒，王立群，陈启仁，等译.北京：科学出版社，1993，16（4）：517.

[6] Basrur P K， Gray D P， Karstad L.Alentian disease（plasmacytosis） of mink. Propagation of virus in mink tissue culture[J]. Can J Comp Med vet Sci， 1963， 27（12）：301-306.

[7] 白文彬，于康震.动物传染病诊断学[M].北京：中国农业出版社，2002：901-903.

[8] 李振荣，吴斌，胡传伟，等.进境水貂阿留申病关键检疫技术的研究[J].中国科学研上海研究所，2000，15（6）：103.

[9] 毕世坤，薛强.水貂阿留申病的检测技术总结[J].山东畜牧兽医，2005（3）：42.

[10] Henson J B，Gorham J R，Leader R W，et al. Experimental hypergammaglobulinemia in mink[J]. Journal of experimental medicine， 1962， 116（3）：357-364.

[11] Cho H J， Ingram D G. Antigen and antibody in Aleutian disease in mink.The Reaction of Antibody with the aleutian disease agent using immunodiffusion and immunoelectroosmophoresis[J].Can J comp Med，1973，37（3）：217-223.

[12] 梁春彩.人工养殖水貂常见病及其防治[J].畜牧兽医科技信息，2005（8）：13.

[13] 刘庆仁，李秀峰，宋旭春.水貂阿留申病的防治经验[J]北京：中国农业出版社，1988，（14）：125.

2.3 碘凝集试验结果

（1）碘凝集的试验结果如下图1所示。

结果判定依据：当向血清中加入碘剂后，混合物还是透明的，呈碘液原来的本色时，判定为阴性（—）；当析出的絮状物量少且小的时候则判定为阳性（++和+）；当混合物中析出大的暗褐色絮状物时判定为强阳性（++++和+++）。

（2） 对A场的1 651只水貂的血清样本进行碘凝集试验后，统计结果如表1。

由表1中可以看出，A场的不同舍的发病情况是不同的，其中6号舍的发病情况最为严重，+++以上的阳性貂占到该舍的31.2%；8号舍的发病情况是调查的5个舍中最轻的，但+++以上的阳性貂也占到了该舍的11.9%。通过该方法检出+以上的阳性貂是1 067只，其阳性率为64.63%；+++以上的阳性貂是333只，其阳性率为20.17%，阴性貂为584只，阴性率为35.37%，由此可见，A场的阿留申病发病情况还是较为严重的。

对B家的513只水貂的血清样本进行碘凝集试验后，统计结果如表2。

由表2可以看到，B家公貂总共101只，其中阳性公貂92只，占公貂总数的92%，阴性公貂占公貂总数的8.00%；母貂总共412只，其中阳性母貂360只，其阳性率为87.38%，+++以上的占母貂总数的39.57%，阴性母貂52只，占母貂总数的12.62%，由此可见，公貂感染阿留申病的比重要大于母貂，更容易感染阿留申病；B家总共有513只水貂，其中，+++以上阳性貂占到了41.91%，将近一半，说明了B家貂场阿留申病的感染情况要比A场更严重。由表3我们可以看到荣成该地区水貂阿留申的阳性率为71.24%。

2.4 对流免疫电泳验证试验结果

由于所采的血样过多，我们只抽取两貂场中的50个血样进行对流免疫电泳试验，其中碘凝集试验显阳性的为20份，阴性为15。阳性个数为19份，阳性符合率为95%；阴性个数为14份， 阴性符合率为93.3%。结果证明，碘凝集试验结果是准确和可靠的。

3 讨 论

3.1 水貂阿留申病的流行病学

该病对所有品系的水貂都能感染。它通过不同方式和途径传播，如病貂污染过的饲料、饮水、食具等。不同年龄和性别的水貂均可感染。本病具有明显的季节性，在秋冬季节的发病率和死亡率大大增加，因为肾脏高度损害的病貂，会表现出渴欲增高，而在秋冬季节由于冰冻，其饮水常常得不到满足，致使原来就衰竭的病貂，在这样急剧恶劣的条件下，发生大批死亡，中国农业科学院通过对国内大、中型水貂养殖场进行调查研究表明，国内水貂养殖场水貂感染率为40%～70%[9]。本试验的结果显示荣成地区的感染率在70%左右，远高于国内的平均水平，说明荣成地区阿留申的感染情况还是非常严重的。

3.2 碘凝集试验与对流免疫试验的优缺点

1962年，Henson等[10]首先将该法应用于对阿留申病毒的检测，碘凝集试验最大的优点在于简便易行，它所要求的试验条件非常低，一般的水貂养殖户都有能力完成这个试验，而且具有依据它淘汰阳性带病貂的能力，能够达到控制蔓延和减少损失的目的，但缺点是检测是非特异性的，有些同样可以引起血清蛋白发生变化的疾病，如脓肿、结核、甚至感冒等病状也均可造成检测结果显阳性，因而不能达到最终扑灭的目的。1972—1974年，Cho和Ingnam[11]首先在加拿大应用对流免疫电泳检测水貂阿留申病，而对流免疫试验在诊断水貂阿留申病中不论是检出率还是特异性和敏感性方面都要高于碘凝集试验，阳性检出率的准确性甚至可以达到100%。缺点是要求的试验条件较高，一般的养殖户不能利用这个方法对水貂进行检测，所以在实际的生产应用中不如碘凝集试验普及。本试验通过这两种方法对荣成地区阿留申病的检测结果是一致的，所以试验结果是可靠准确的。

3.3 关于阿留申病防治的讨论

（1）首先应该加强对饲养管理的重视程度，必须保证饲料的优质、新鲜和全价，这样可以有效提高水貂自身的机体抵抗力，从根本上将水貂发病控制在较低水平。

（2）由于病貂的尿液、唾液和粪便都可能含有阿留申病毒，所以对兽场内的用具、食具笼舍和地面都要定期进行消毒。最有效的消毒方法是用喷灯火焰或蒸气处理预先清扫过的笼舍表面。在化学药物中应用5%福尔马林溶液消毒金属结构，用2%的硷溶液或漂白粉处理兽场地面[12]。

（3）病貂和潜伏期带病貂的病毒长期存在于病貂体内，可以建立定期检疫和淘汰阳性貂制度。可以每年检疫2次，第一次在配种开始前，通常在1—2月间进行；第二次在选留种期间，一般在9—10月间进行。所以每年可通过本试验的碘凝集试验或对流免疫电泳两种诊断方法进行检疫，先检查成年水貂，后检查幼龄水貂，对幼龄水貂只有其双亲都是阴性反应者方可留做种用。处杀阳性貂，逐年减少发病率，经过3～5年时间，可以使貂场的阳性率控制在5%以内[13]。

参考文献：

[1] 吴清民.兽医传染病学[M].北京：中国农业大学出版社，2001：310-314.

[2] 徐凤宇，王树志.水貂阿留申病概述[J].经济动物学报，2006，10（2）：106-109.

[3] 黄永凯，周煜，孔德军.水貂阿留申病[J].云南畜牧兽医，2006（5）：41.

[4] 张丽华.貂阿留申病发病机理与防治[J].吉林畜牧兽医，2011（8）：32.

[5] Ellis L C. 阿留申病的现状及发展趋势[M].董克舒，王立群，陈启仁，等译.北京：科学出版社，1993，16（4）：517.

[6] Basrur P K， Gray D P， Karstad L.Alentian disease（plasmacytosis） of mink. Propagation of virus in mink tissue culture[J]. Can J Comp Med vet Sci， 1963， 27（12）：301-306.

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