王 艺 董凯玥 吴建军 赵旭民 李罗新金佳利 褚志鹏 柴 毅 刘 伟*

(1.长江大学农学院/动物科学学院，荆州434020；2.中国水产科学研究院长江水产研究所，农业农村部淡水生物多样性保护重点实验室，武汉430223；3.上海海洋大学水产与生命学院，上海201306；4.武汉新华扬生物股份有限公司，武汉430074；5.浙江华太生物科技有限公司，金华322005)

与畜禽相比，鱼类对糖利用率不高，尤其是肉食性鱼类[1-2]。随着水产养殖和饲料业的不断发展,鱼粉的价格日益上涨，在鱼类饲料中常以植物蛋白质原料替代部分鱼粉[3-4],但植物蛋白质原料含有较多的糖类[5]；另外，为达到膨胀和黏合的目的，在水产膨化饲料加工过程中也需要加入一定水平糖类来增强物料的黏性，帮助膨化饲料形成一定硬度并增加其在水中的稳定性[6]。因此，这更容易造成肉食性鱼类饲料中的糖含量超过其耐受能力[7-9]。

大口黑鲈(Micropterussalmoides)是我国重要的淡水经济鱼类，作为典型的肉食性鱼类，大口黑鲈相较于大菱鲆(Scophthalmusmaximus)[10]、军曹鱼(Rachycentroncanadum)[11]等肉食性鱼类，对糖的利用能力更差[12]。长期摄食高糖饲料，会导致大口黑鲈生长受阻，肝糖原和脂肪含量增加[13]，造成肝脏肥大、颜色苍白以及肝细胞空泡区增加[7, 14]，引发肝脏功能性损伤[12,15-16]。同时，摄食高糖水平饲料会改变大口黑鲈肠道形态，增加肠道炎症相关基因表达，降低肠道益生菌丰度和肠道对有害细菌的抵抗力[17]。因此，如何提高大口黑鲈对饲料中糖的适应性，改善肝脏和肠道健康，对发展其规模化健康养殖尤为重要。

植物甾醇是一种广泛存在于各种植物油、坚果和植物种子中的甾体化合物。近年来，因其具有良好的降血脂功效而较多应用于医学和食品生产中[18]。目前，在畜禽动物中，已有许多研究发现，饲料中添加适量植物甾醇，可以显著提高其生长性能[19-20]、增强抗氧化能力[21]、降低血脂水平[22]和改善肉质[23]。而进一步的研究发现，植物甾醇可以减少肝脏炎症发生[24]并可降低肝糖原沉积[25]。目前关于植物甾醇在水产动物方面的报道不多，但也发现饲料中添加适量的植物甾醇可显著提高如团头鲂(Megalobramaamblycephala)[26]、罗氏沼虾(Macrobrachiumrosenbergii)[27]和大口黑鲈[28]等的生长性能和抗氧化能力，并具有降低血脂含量的作用。但现在仍不清楚植物甾醇是否可以降低鱼类肝糖原积累，以及对鱼类肝脏和肠道健康是否有改善作用。

因此，本研究在龚红等[28]的研究基础上，再次以大口黑鲈为研究对象，重新评估植物甾醇对其生长性能、饲料利用、体成分、肝脏和肠道健康以及肌肉质构的影响，以期为植物甾醇在鱼类饲料中的应用提供参考依据。

1 材料与方法

1.1 试验饲料

本试验以鱼粉和鸡肉粉等为主要蛋白质源，鱼油和豆油为脂肪源，配制基础饲料。根据植物甾醇在团头鲂[26]、吉富罗非鱼[27]和大口黑鲈[28]等水产动物中的研究结果，本试验在基础饲料中分别添加0(对照)、22.5、45.0、67.5和90.0 mg/kg的植物甾醇，共配制出5种试验饲料，分别记作TZ0、TZ22、TZ45、TZ67和TZ90。

饲料配制之前，先将鱼粉和豆粕等饲料原料进行粉碎处理，过60目筛，然后按照配方逐级混匀。其中，先以面粉为稀释剂将植物甾醇预混料(含总甾醇15%，其中菜油甾醇6%，谷甾醇8%，豆油甾醇1%)逐级混匀后与其他原料再次混匀。将鱼油和豆油混合均匀后加入到配合好的原料中，再次混匀，加入适量的自来水后，使用饲料机(TSE65，北京现代洋工机械科技发展有限公司)将其加工制成直径2 mm的颗粒饲料，70～80 ℃干燥15 min(带式干燥机，DW型，常州苏式干燥设备有限公司)，放至室温后储藏于-20 ℃冰箱中备用。试验饲料组成及营养水平见表1。

表1 试验饲料组成及营养水平(干物质基础)

续表1项目 Items组别 GroupsTZ0TZ22TZ45TZ67TZ90植物甾醇预混料 Phytosterol premix0.0150.03 0.0450.06面粉 Wheat flour 7.00 7.000 7.00 7.0007.00 木薯粉 Tapioca7.00 7.000 7.00 7.000 7.00 酵母 Yeast1.00 1.000 1.00 1.000 1.00 膨润土 Bentonite0.50 0.500 0.50 0.500 0.50 磷酸二氢钙 Ca(H2PO4)21.50 1.500 1.50 1.500 1.50 鱼油 Fish oil3.00 3.000 3.00 3.000 3.00 大豆油 Soybean oil3.00 3.000 3.00 3.000 3.00 维生素预混料 Vitamin premix3)1.00 1.000 1.00 1.000 1.00 矿物质预混料 Mineral premix4)1.00 1.000 1.00 1.000 1.00 氯化胆碱 Choline chloride0.15 0.150 0.15 0.150 0.15 合计 Total100.00100.000100.00100.000100.00营养水平 Nutrient levels5)粗蛋白质 Crude protein53.07 53.05 53.10 53.04 53.10 粗脂肪 Crude lipid10.01 10.06 10.04 10.07 10.09 粗灰分 Ash13.87 13.70 13.61 13.67 13.90

1.2 试验鱼与饲养管理

试验用鱼(优鲈3号)为购自荆州渔都特种水产养殖公司孵化的同一批鱼。在正式养殖试验前，为尽快驯化大口黑鲈使之对投喂及投喂人员产生条件反射，适应试验养殖环境，所有鱼用TZ0饲料暂养2周，每日投喂3次，分别为08:30、12:30和16:30，表观饱食投喂。但在驯化过程中，由于大口黑鲈在中午的摄食并不积极，摄食量较低，容易造成饲料浪费，故在正式试验中对试验鱼进行每日2次投喂。

试验开始前，试验鱼禁食24 h。挑选出600尾个体健壮、规格一致，初始平均体重为(5.01±0.06) g的大口黑鲈。养殖于15个流水养殖桶中(直径1.0 m，水深0.35 m，水体体积约270 L)，每桶40尾，将15个桶随机分为5组，每组3个重复，分别投喂5种试验饲料。每日表观饱食投喂2次(08:00和16:30)。每日记录水温、大口黑鲈摄食行为和死亡数量等，养殖用水为地下水。饲养期间的水质条件为：水温20～23 ℃，溶解氧含量大于5.0 mg/L，pH 6.8～7.3，氨氮含量小于0.1 mg/L，亚硝酸盐含量小于0.01 mg/L。养殖试验持续8周。

1.3 样品采集和分析

1.3.1 样品采集

养殖试验结束后，禁食24 h后，用MS-222麻醉(120 mg/L)，对每桶试验鱼进行计数和称重，用于计算成活率、增重率和特定生长率，并根据饲料总投喂量计算饲料系数。禁食48 h后，用MS-222麻醉(120 mg/L)，每桶随机取3尾鱼，测量体长和体重，用于计算肥满度，随后进行尾部静脉取血，4 ℃冰箱内静置2 h，3 000 r/min的转速离心15 min，取上清液，置于-80 ℃冰箱中，用于测定血清生化指标。解剖取相同部位的肝脏、肠道，置于4%多聚甲醛中，用于制作组织切片。每桶随机取3尾鱼，麻醉后解剖取内脏，称重并记录用于计算脏体比。将肝脏由内脏中分离，称重并记录用于计算肝体比，取肝脏样品，用于测定抗氧化指标和肝糖原含量，取去内脏全鱼鱼体背部侧线上方肌肉并保存肌肉样品，用于测定肌糖原含量和营养组成。每桶随机取3尾鱼，-20 ℃保存，用于测定全鱼常规营养组成。每桶随机取4尾鱼，取鱼体背部左侧侧线上方肌肉，立即用于肌肉质构的测定。

1.3.2 饲料和鱼体组成分析

饲料、全鱼和肌肉营养组成的分析方法如下：水分含量测定采用105 ℃干燥法(GB/T 5009.3—2003)，粗蛋白质含量测定采用凯氏定氮法(GB/T 5009.5—2003)，粗脂肪含量测定采用索式抽提法(GB/T 5009.6—2003)，粗灰分含量测定采用灼烧称重法(GB/T 5009.4—2003)。糖原含量测定采用南京建成生物工程研究所试剂盒(比色法)，按照试剂盒使用说明进行操作。

1.3.3 血清生化指标测定

血清葡萄糖(glucose,GLU)、甘油三酯(triglyceride,TG)、总蛋白(total protein,TP)、白蛋白(albumin,ALB)、总胆固醇(total cholesterol,TC)、高密度脂蛋白胆固醇(high density lipoprotein cholesterol,HDL-C)、低密度脂蛋白胆固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)含量及谷草转氨酶(aspartate aminotransferase,AST)、谷丙转氨酶(alanine aminotransferase,ALT)、碱性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)、脂肪酶(lipase,LIP)和α-淀粉酶(α-amylase,α-AMY)活性由全自动生化分析仪(BS-460，深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司)测定，所用试剂均为购自深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司生产的同一批次试剂。

1.3.4 血清和肝脏抗氧化指标测定

抗氧化指标采用南京建成生物工程研究所试剂盒测定，测定指标包括丙二醛(MDA,TBA法)含量及过氧化氢酶(CAT,钼酸铵法)和超氧化物歧化酶(SOD,WST-1法)活性，按照试剂盒使用说明进行操作。

1.3.5 肌肉质构测定

每桶随机取4尾鱼，取鱼体背部左侧侧线上方肌肉，立即用于肌肉质构测定。样本修整为1 cm×1 cm×1 cm块状。使用质构分析仪(TVT-300XP型，波通瑞华科学仪器北京有限公司)依据文献[29]中使用的质地剖面分析法(texture profile analysis,TPA)进行测定，参数设定如下：采用25 mm×25 mm的柱形探头，测定间隔时间为5 s，接触感应力为5 g，压缩比为60%，数据获得速率为200.00 pps，测试速度1 mm/s，每个样品重复测定3次,取平均值。肌肉质构特性测定指标包括：硬度、弹性、凝聚性、胶黏性、咀嚼性、黏连性、回复性、黏附性。

1.3.6 肝脏、肠道形态结构分析

肝脏、肠道经4%多聚甲醛固定24 h后，进行常规石蜡包埋切片，厚度为6 μm，苏木精-伊红(HE)染色，制作切片。

肝脏和肠道组织标本石蜡切片采用光学显微镜(CX33型，奥林巴斯工业)观察并用成像系统进行成像和图像采集。其中，肝脏细胞长度、细胞宽度、细胞核直径、肠道组织绒毛高度、绒毛宽度和肌层厚度由软件Image-pro plus 9.0测量。

肝脏组织颜色由测色色差计(WSC-1B型，上海仪电物理光学仪器有限公司)测定。将所取肝脏样品置于干净滤纸上，测色色差计探头对准肝脏样品，测定亮度(L*)值、红度(a*，+a*偏红，-a*偏绿)值和黄度(b*，+b*偏黄,-b*偏蓝)值。

1.4 计算公式

成活率、增重率、摄食率、特定生长率、饲料系数、肥满度、肝体比和脏体比参照以下公式计算：

成活率(%)=100×(试验末鱼总数/
试验初鱼总数)；增重率(%)=100×(终末体重-
初始体重)/养殖天数；摄食率(%)=100×投喂饲料总重/[(初始总重+
终末总重)/2]/养殖天数；特定生长率(%/d)=100×(1n终末体重-
1n初始体重)/养殖天数；饲料系数=投喂饲料总重/(终末体重-初始体重)；肥满度(g/cm3)=100×终末体重/
终末体长3；脏体比(%)=100×内脏团重/终末体重；肝体比(%)=100×肝脏重/终末体重。

1.5 数据处理和统计分析

所有数据由Excel 2019整理后用SPSS 22.0软件进行统计分析。先进行ANOVA单因子方差分析，若组间差异显著，再用Duncan氏法进行多重比较，P<0.05为差异显著。结果均以“平均值±标准误”(n=3)表示。二次回归模型采用Origin 2021进行多项式拟合分析后制作。

2 结 果

2.1 植物甾醇对大口黑鲈生长性能和饲料利用的影响

各组试验鱼均无死亡情况发生，成活率为100%。由表2可知，与TZ0组相比，饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈生长性能和饲料利用无显著影响(P>0.05)。

表2 饲料添加植物甾醇对大口黑鲈生长性能和饲料利用的影响

2.2 植物甾醇对大口黑鲈体成分的影响

由表3可知，在全鱼中，植物甾醇对试验鱼的粗蛋白质和粗灰分含量无显著影响(P>0.05)，但是饲料中添加植物甾醇有提高水分含量、降低粗脂肪含量的趋势。与TZ0组相比，TZ22、TZ67和TZ90组全鱼肌肉水分含量显著提高(P<0.05)，TZ45、TZ67和TZ90组粗脂肪含量显著降低(P<0.05)。在肌肉中，试验鱼肌肉的水分含量随植物甾醇添加量的提高呈上升趋势。其中，与TZ0组相比，TZ22、TZ67和TZ90组水分含量显著提高(P<0.05)。TZ45、TZ67和TZ90组肌糖原含量显著降低(P<0.05)。在肝脏中，饲料中添加植物甾醇显著降低了试验鱼肝糖原含量(P<0.05)。其中，肝糖原含量在TZ90组时达到最低，显著低于TZ0组(P<0.05)。随着饲料中植物甾醇添加量的提高，肝脏粗脂肪含量呈先下降后上升的趋势，在TZ45组达到最低，与TZ0组差异不显著(P>0.05)。

2.3 植物甾醇对大口黑鲈血清生化指标的影响

由表4可知，饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈血清中的LDL-C、HDL-C、TC、TP、ALB含量及ALP、LIP和α-AMY活性无显著影响(P>0.05)。与TZ0组相比，TZ22和TZ67组血清ALT活性显著降低(P<0.05)；TZ22、TZ45和TZ67组血清AST活性显著降低(P<0.05)；TZ45和TZ90组血清GLU含量显著升高(P<0.05)；TZ22、TZ67和TZ90组血清TG含量显著升高(P<0.05)。

2.4 植物甾醇对大口黑鲈血清和肝脏抗氧化指标的影响

由表5可知，与TZ0组相比，饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈血清SOD活性、肝脏SOD活性和肝脏MDA含量无显著影响(P>0.05)。在血清中，与TZ0组相比，TZ90组MDA含量显著降低(P<0.05)，TZ67组CAT活性显著升高(P<0.05)；在肝脏中，与TZ0组相比，TZ90组CAT活性显著降低(P<0.05)。

表3 饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈体成分的影响

表4 饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈血清生化指标的影响

表5 饲料添加植物甾醇对大口黑鲈血清和肝脏抗氧化指标的影响

续表5项目 Items组别 GroupsTZ0TZ22TZ45TZ67TZ90肝脏 Liver丙二醛 MDA/(nmol/mg prot)0.83±0.130.43±0.03 0.55±0.120.50±0.18 0.40±0.06超氧化物歧化酶 SOD/(U/mg prot)13.39±0.3310.03±0.90 12.74±0.5710.92±0.17 12.48±1.21过氧化氢酶 CAT/(U/mg prot)10.31±0.66b7.80±1.77ab9.71±0.84b9.61±0.18b4.30±0.20a

2.5 植物甾醇对大口黑鲈肌肉质构特性的影响

由表6可知，饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈肌肉弹性、内聚性、胶黏性、咀嚼性和回复性无显著影响(P>0.05)，但饲料中添加植物甾醇显著增加了试验鱼肌肉硬度、黏连性和黏附性(P<0.05)。其中，试验鱼的肌肉硬度随着植物甾醇添加量的增加，表现出先增加后降低的趋势，并在TZ67组达到最大；黏连性和黏附性随植物甾醇添加量的提高有上升的趋势，其中，黏连性在TZ45组达到最大，黏附性在TZ90组达到最大。

表6 饲料中添加甾醇对大口黑鲈肌肉质构特性的影响

2.6 植物甾醇对大口黑鲈细胞形态和肝脏颜色的影响

由表7可知，饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈肝细胞的细胞核直径、细胞长度、L*和b*值无显著影响(P>0.05)。与TZ0组相比，除TZ90组外，各组间试验鱼肝细胞宽度无显著差异(P>0.05)；TZ45组a*值显著高于TZ0组(P<0.05)。

表7 饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈肝细胞形态和肝脏颜色的影响

由图1可知，与TZ0组相比，饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈肝脏组织结构无明显影影响。各组试验鱼的肝脏组织较为完整，细胞与细胞之间界限清晰，未出现炎症细胞浸润及肝细胞损伤情况。但是，各组试验鱼肝细胞均有细胞肿胀、细胞核偏移和细胞空泡化的发生。

2.7 植物甾醇对大口黑鲈肠道形态结构的影响

由图2可知，TZ0组试验鱼的肠道存在明显的受损现象，表现为增生、坏死、萎缩情况，甚至出现纹状缘局部受损现象，且肠绒毛排列不规则。相比于TZ0组，TZ22、TZ45、TZ67和TZ90组肠绒毛结构完整，纹状缘排列整齐，肠绒毛异常现象不明显。

由表8可知，饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈肠道绒毛特征无显著影响(P>0.05)。但相比于TZ0组，饲料中添加植物甾醇有提高试验鱼的肠绒毛高度的趋势，在TZ67组达到最高；而绒毛宽度则呈下降趋势，TZ90组时达到最低。

2.8 大口黑鲈饲料中植物甾醇最适添加量

以饲料中植物甾醇添加量为自变量(x)，以大口黑鲈全鱼粗脂肪含量为因变量(y)作回归分析，得到二次回归方程y=3.014×10-4x2-0.038 6x+7.425 (R2=0.961)。当x为64.0 mg/kg，大口黑鲈全鱼粗脂肪含量达到最低(图3)；以肝糖原含量(y)为评价指标，通过二次回归方程y=8.95×10-4x2-0.106x+8.203(R2=0.818)计算得到当饲料中植物甾醇添加量为59.2 mg/kg时，大口黑鲈肝糖原含量达到最低(图4)。

VH：绒毛高度 villus height；VW:绒毛宽度 villus width；MT:肌层厚度 muscles thickness。

3 讨 论

3.1 饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈生长性能的影响

在团头鲂的研究中发现，饲料中添加植物甾醇可以显著提高鱼体的增重率和特定生长率，对鱼体生长具有促进作用[26]。这与植物甾醇具有类激素作用，能够调节垂体与肝脏功能，促进生长激素和胰岛素样生长因子-Ⅰ(IGF-Ⅰ)的分泌有关[30]。但在本研究中并未发现大口黑鲈的生长性能随植物甾醇的添加出现显著提高。这可能与大口黑鲈的生物学特性有关。大口黑鲈属温水性鱼类，其生长最适水温为25～30 ℃[31]，本试验期间的水温为20～23 ℃，而研究表明，当水温在25 ℃以上时，大口黑鲈特定生长率可达到最高[32]。因此，可能由于本试验期间水温未能达到大口黑鲈最适水温，影响了大口黑鲈的生长速度。

在团头鲂[26]、罗氏沼虾[27]和大口黑鲈[28]等报道中，根据生长表现得到的饲料中植物甾醇最适添加量分别为40、40和30 mg/kg，而在本研究中也发现以生长性能作为效应指标时，大口黑鲈饲料中植物甾醇最适添加量为45 mg/kg。但是，本研究以全鱼粗脂肪含量、肝糖原含量为效应指标时，大口黑鲈饲料中植物甾醇适宜添加量为59.2～64.0 mg/kg，稍高于以生长需要而确定的最适添加量。这可能和生长与生理需要(如抗氧化能力、消化酶活性和免疫力等)不同有关，这在鱼类维生素的相关研究中也有类似发现[33-35]。

表8 饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈肠道绒毛特征的影响

图3 饲料添加植物甾醇对大口黑鲈

图4 饲料添加植物甾醇对大口黑鲈

3.2 饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈肝脏健康的影响

肝脏是鱼类糖代谢的主要场所，鱼类摄入含高水平糖类的饲料会造成肝糖原含量升高[36]，当糖原积累过量时，会导致肝脏异常增大从而使肝细胞功能受损[37]。本研究中发现，饲料中添加适量植物甾醇可以有效减少肝糖原的积累。这与在田鼠[38]和大鼠[25]中的研究结果一致。这或许与植物甾醇能提高肝糖原磷酸化酶活性有关[38]，糖原磷酸化酶可以催化糖原的磷酸解。在本研究中，饲料中添加植物甾醇提高了大口黑鲈的血清GLU含量，与Panda等[39]研究中大鼠的表现类似。这可能与植物甾醇对肝糖原分解的促进作用有关[25]。

在正常状态下,AST和ALT在血液中的活性较低。但当肝细胞发生病变和损伤时，会引起细胞膜通透性增加,导致这2种酶由细胞内释放到血液中[40]。因此,AST和ALT活性也常作为反映肝脏功能受损的特异性指标。本研究中发现，与TZ0组相比，TZ22和TZ67组血清ALT活性显著降低，TZ22、TZ45和TZ67组血清AST活性显著降低，这表明饲料中添加植物甾醇可以改善大口黑鲈肝脏健康。

细胞在能量代谢过程中会产生活性氧(ROS)，当ROS产生过多会导致细胞和组织损伤,即氧化应激[41]。而SOD和CAT可以清除自由基，保护细胞免受ROS损伤[42]。MDA作为脂质过氧化的最终产物，其含量常被用于评估机体的脂质过氧化程度[43]。而植物甾醇可以通过调节抗氧化酶和自由基的产生来保护机体免受氧化应激的伤害[44-47]。在本试验中，肝脏MDA含量随着饲料中植物甾醇添加量的升高呈下降趋势，这与在罗非鱼[27]中的研究结果一致，说明植物甾醇可以提高肝脏抗氧化能力。此外，本研究也发现，TZ90组肝脏CAT活性显著降低。这可能是添加植物甾醇后肝脏的健康状况得到改善，肝脏中过氧化氢含量减少，而无需表达或激活CAT的活性[48]。

肝脏颜色通常也是判断肝脏健康的重要评价指标之一[15]。本试验中发现，代表肝脏红度的a*值随着植物甾醇添加量的增加呈上升趋势，表明随着植物甾醇添加量的提高，肝脏颜色更红，而这通常被认为是肝脏健康的表现。本研究中，组织学分析结果显示，各组肝脏组织较为完整，细胞与细胞之间界限清晰，未出现炎症细胞浸润及肝细胞损伤情况。但是，各组肝细胞均发现肝细胞空泡化以及细胞核受挤压偏移的现象发生。一般来讲，这种情况在养殖鱼类中较为常见[49]。空泡含有脂质和糖原，这与肝脏的正常代谢功能有关[50]。一些研究发现，肝脏中脂质和糖原沉积过高会导致肝脏病变，对鱼的健康造成不良影响[51]。从本试验中有关肝脏健康状况评价的血清生化指标，如血清ALT、AST活性的结果来看，饲料中添加适量植物甾醇确实可以改善肝脏健康，但是在组织学上这种改善并不明显。

3.3 饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈肠道健康的影响

研究表明，饮食因素可能会干扰鱼体肠内的稳态和结构特征[52-53]。在本研究中，TZ0组肠道存在明显增生、坏死、萎缩情况，甚至出现纹状缘局部受损现象，且肠绒毛排列不规则。而添加植物甾醇后，肠道结构得到明显改观，表明植物甾醇有利于大口黑鲈肠道健康。

肠道是食物消化、吸收和运输的主要器官，肠道功能对营养物质的吸收非常重要[54]，可通过测量绒毛特征来评估肠道的健康和功能[55]。在本研究中，植物甾醇在一定程度上有提高大口黑鲈肠绒毛高度和降低绒毛宽度的趋势，这通常被认为是肠道结构形态得到改善的表现[56]。

3.4 饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈肌肉质构的影响

肌肉的质构特性是决定其可口性的重要因素，是肉质主要的感官和理化指标[57-58]。硬度是指使食品达到一定变形所需要的力，食品保持形状的内部结合力[59]。硬度越大，抵抗牙齿压力的能力越大，发生断裂所需的变形力越大，弹性也相应的越大。一般而言，鱼肉硬度的提高表明肉质得到了改善[60]。黏连性是指样品在与压力探头分离前减压过程中的延展距离，黏连性越大，表明样品延展性越好。黏附性是指探头脱离样品所需的能量，反映在咀嚼鱼肉时，鱼肉表面与舌、齿等之间的黏力[59]。在本研究中，TZ22、TZ45、TZ67组大口黑鲈肌肉硬度、黏连性和黏附性均显著高于TZ0组，表明大口黑鲈肌肉质构特性得到提升，植物甾醇显著改善了大口黑鲈的肌肉品质。

4 结 论

在本试验条件下，饲料中添加植物甾醇对大口黑鲈的生长性能无显著影响，但也发现适量的植物甾醇可以显著降低大口黑鲈肝脏和肌肉的糖原积累，提高其肌肉品质，并改善其肝脏和肠道健康情况。以全鱼粗脂肪含量、肝糖原含量为效应指标，经二次回归模型分析后，发现大口黑鲈饲料中植物甾醇适宜添加量为59.2～64.0 mg/kg。