郭坤，金辉，吴留广

作者单位：周口市中心医院心脏血管外科，河南 周口466000

冠心病属于临床常见心脏疾病，近年来冠心病发病率逐年升高，发病年龄逐渐趋向于年轻化［1］。冠心病病人病情加重可发展为心肌梗死、脑卒中等不良心血管疾病，其中心肌细胞凋亡在冠心病的发生、发展中发挥重要作用［2］。缺氧诱导因子-1α（Hypoxia-inducible factor-1α，HIF-1α）属于缺氧反应重要调节因子，广泛参与细胞促凋亡或抗凋亡过程，近期研究发现HIF-1α可介导心肌细胞凋亡，Bcl2/腺病毒E1B相互作用蛋白3（BNIP3）由HIF-1α诱导表达，同时也是心肌细重要的促凋亡蛋白因子［3］。基于对冠心病心肌细胞凋亡的认知，HIF-1α/BNIP3可能成为冠心病的治疗新靶点。速效救心丸由川芎、冰片、麝香、蟾酥等中药组成，可增加冠脉血流量，在治疗冠心病心绞痛方面效果较好，然而其具体药理机制目前尚不明确［4］。本研究于2018年8月至2019年2月通过复制冠心病模型大鼠，给予速效救心丸治疗，旨在探究其药理机制，试图为速效救心丸的临床应用提供新的思路。

1 材料与方法

1.1实验动物SPF级别SD大鼠70只，雄性，购于河南省实验动物中心［使用许可证号：SYXK（豫）2018-0006］，8周龄，体质量（223.54±15.37）g。

1.2实验药物速效救心丸购于天津中新药业集团股份有限公司第六中药厂，批号为180325；使用时将药丸用研钵研磨成细粉状，用双蒸水进行溶解，使其最终浓度为1.28 g/L［5］。HIF-1α激活剂奥替普拉（Oltipraz）购于美国Selleck Chemicals，货号为64224-21-1。

1.3试剂与仪器三酰甘油（批号180312）、总胆固醇（批号 180328）、高密度脂蛋白（HDL）（批号180411）、低密度脂蛋白（LDL）（批号180409）检测试剂盒购于南京建成生物工程公司，一氧化氮检测试剂盒［批号JK-（a）-2328］购于上海晶抗生物工程有限公司；内皮素-1（ET-1）（批号E06979r）、前列环素I2（PGI2）（批号E13706r）检测试剂盒购于武汉华美生物工程有限公司；大鼠肿瘤坏死因子α（TNF-α）检测试剂盒（批号PT520）、苏木精-伊红（HE）染色试剂盒（批号C0105）、TUNEL染色试剂盒（批号C1088）均购于碧云天生物技术有限公司；单核细胞趋化蛋白-1（MCP-1）（批号180216A）、细胞间黏附分子-1（ICAM-1）（批号180308A）检测试剂盒购于美国R&D公司；RIPA裂解液（批号EX6020）购于金克隆（北京）生物技术有限公司；BCA检测试剂盒（批号23225）购于美国PIERCE公司；鼠抗HIF-1α（批号36169）、BNIP3（批号 44060）、Bcl-2相关 X 蛋白（Bax）（批号 5023）、β-肌动蛋白（β-actin）（批号3700）购于美国CST公司；B细胞淋巴瘤/白血病-2（Bcl-2）（批号ab185002）、半胱氮酸天冬氨酸蛋白酶-3（caspase-3）（批号 ab197202）、辣根过氧化物酶（HRP）标记二抗（批号ab205719）购于英国Abcam公司；酶标仪Synergy2购于美国Bio-Tek公司；自动生化检测仪MS-18购于澳普森公司；JVD-80垂直电泳仪购于IBI；伯乐ChemiDoc MP型凝胶成像仪购美国Bio-Rad公司；光学显微镜购于日本Olymplus公司。

1.4实验方法

1.4.1模型制备 参考文献法［6］复制冠心病大鼠，将大鼠分为健康组（n＝10）以及模型组（n＝60），模型组大鼠每日腹腔注射维生素D3，剂量为60万单位/kg，同时灌胃10 mL/kg脂肪乳，连续造模12周。造模结束前3 d，健康组大鼠腹腔注射1 mL/kg 0.9%氯化钠溶液，模型组大鼠腹腔注射30 U/kg垂体后叶素，间隔24 h注射1次，共注射3次，诱发冠状动脉痉挛，心电图检测以PR段为基线记录J点位移，当J点变化幅度超过0.1 mV视为发生心肌缺血。模型组最终40只大鼠造模成功，造模成功率为66.67%。

1.4.2动物给药与分组 造模结束后，将40只模型大鼠分为单纯模型组，速效救心丸组、奥替普拉组、速效救心丸+奥替普拉组，每组10只大鼠。速效救心丸组：造模结束后，灌胃速效救心丸水溶液，剂量为1.28 g/kg，单纯模型组：每日灌胃等量双蒸水；奥替普拉组：造模结束后，灌胃奥替普拉，剂量为0.5 g/kg；速效救心丸+奥替普拉组：造模结束后，首先灌胃0.5 g/kg奥替普拉，15 min后灌胃1.28 g/kg速效救心丸水溶液。各组连续处理2周。

1.4.3心电图检测 末次给药结束后，所有大鼠采用心电监测仪记录标准II导联心电图变化。

1.4.4大鼠血清中血脂相关水平检测 采集大鼠尾静脉血1 mL，3 000 g离心5 min分离血清，参照试剂盒说明书对血清总胆固醇、三酰甘油、HDL、LDL水平进行检测。

1.4.5血清TNF-α、MCP-1、ICAM-1水平检测 采用酶联免疫吸附试验检测血清中TNF-α、MCP-1、ICAM-1含量，严格按照实试剂盒说明书进行操作。

1.4.6血清一氧化氮、ET-1、PGI2水平检测 血清一氧化氮水平测定采用硝酸还原酶法检测，ET-1、PGI2水平采用酶联免疫吸附试验检测，依据试剂盒说明书进行测定。

1.4.7HE染色观察大鼠心肌组织病理形态学变化 尾静脉血采集后将大鼠处死，获取心肌组织，置于4%多聚甲醛中过夜固定，常规制备心肌组织石蜡切片，经脱蜡、梯度乙醇脱水后，采用HE染色试剂盒对切片进行染色，在光学显微镜下观察心肌组织形态学变化情况。

1.4.8DNA断裂的原位末端标记法（TUNEL法）检测心肌组织细胞凋亡情况 将心肌组织石蜡切片在二甲苯中脱蜡、无水乙醇脱水后，用蛋白酶K室温下孵育20 min，磷酸缓冲盐溶液（PBS）清洗后，添加TUNEL检测液，37℃避光孵育1 h，PBS清洗2次，并在PBS中悬浮，采用荧光显微镜下观察细胞染色情况，发射波长为515～565 nm。采用Image-J软件定量分析心肌细胞凋亡率，细胞凋亡率＝绿色荧光细胞/细胞总数×100%。

1.4.9蛋白质印迹法检测心肌组织HIF-1α、BNIP3、Bcl-2、Bax、caspase-3蛋白表达 将大鼠心肌组织用裂解液裂解后提取组织总蛋白，经十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）电泳分离蛋白后转移至聚偏二氟乙烯膜（PVDF膜）上，BSA封闭后，用HIF-1α、BNIP3、Bcl-2、Bax、caspase-3一抗孵育膜，4℃过夜后添加二抗（1∶3 000）孵育膜，37℃反应1 h，采用发光试剂盒显色后，在凝胶成像仪内采集图片，采用Image-J软件对蛋白条带进行定量分析。

1.5统计学方法采用统计学软件SPSS 22.0进行数据分析，计量资料以±s描述，多组间比较行单因素方差分析，进一步两两对比采用SNK-q检验，当P＜0.05时，则差异有统计学意义。

2 结果

2.1速效救心丸对大鼠心电图ST段的影响与健康组相比，单纯模型组ST段、T波明显升高（P＜0.05）；速效救心丸组ST段、T波显著低于单纯模型组，奥替普拉组ST段、T波显著高于单纯模型组（P＜0.05）；速效救心丸+奥替普拉组ST段、T波显著低于奥替普拉组（P＜0.05）。见表1。

表1健康大鼠和冠心病大鼠心电图ST段比较/（mV，±s）

表1健康大鼠和冠心病大鼠心电图ST段比较/（mV，±s）

注：与健康组相比，aP＜0.05；与单纯模型组相比，bP＜0.05；与速效救心丸组相比，cP＜0.05；与速效救心丸+奥替普拉组相比，dP＜0.05

T波0.09±0.03 0.26±0.05a 0.15±0.04ab 0.24±0.05ac 0.35±0.03abcd 60.536＜0.001组别健康组单纯模型组速效救心丸组速效救心丸+奥替普拉组奥替普拉组F值P值鼠数10 10 10 10 10 ST段0.15±0.04 0.36±0.05a 0.23±0.04ab 0.34±0.06ac 0.41±0.05abcd 47.331＜0.001

2.2速效救心丸对大鼠血脂指标的影响与健康组相比，单纯模型组三酰甘油、总胆固醇显著升高，HDL显著降低（P＜0.05）。速效救心丸组三酰甘油、总胆固醇显著低于单纯模型组，HDL显著高于单纯模型组（P＜0.05）；奥替普拉组三酰甘油、总胆固醇显著高于单纯模型组，HDL显著低于单纯模型组（P＜0.05）。速效救心丸+奥替普拉组三酰甘油、总胆固醇显著低于奥替普拉组，HDL显著高于奥替普拉组（P＜0.05）。见表2。

2.3速效救心丸对大鼠血清炎性因子的影响与健康组相比，单纯模型组TNF-α、MCP-1、ICAM-1显著升高（P＜0.05）。速效救心丸组TNF-α、MCP-1、ICAM-1显著低于单纯模型组；奥替普拉组TNF-α、MCP-1、ICAM-1显著高于单纯模型组（P＜0.05）。速效救心丸+奥替普拉组TNF-α、MCP-1、ICAM-1显著低于奥替普拉组（P＜0.05）。见表3。

表2 健康大鼠和冠心病大鼠血脂指标水平比较/（mmol/L，±s）

表2 健康大鼠和冠心病大鼠血脂指标水平比较/（mmol/L，±s）

注：HDL为高密度脂蛋白，LDL为低密度脂蛋白。与健康组相比，aP＜0.05；与单纯模型组相比，bP＜0.05；与速效救心丸组相比，cP＜0.05；与速效救心丸+奥替普拉组相比，dP＜0.05

LDL 0.57±0.09 0.64±0.10a 0.63±0.09ab 0.62±0.13ac 0.58±0.08abcd 0.980＜0.001组别健康组单纯模型组速效救心丸组速效救心丸+奥替普拉组奥替普拉组F值P值鼠数10 10 10 10 10三酰甘油0.65±0.06 1.08±0.14a 0.85±0.07ab 1.06±0.13ac 1.27±0.12abcd 47.618＜0.001总胆固醇1.82±0.18 3.24±0.35a 2.24±0.29ab 3.16±0.37ac 3.78±0.43abcd 56.751＜0.001 HDL 1.13±0.29 0.59±0.05a 0.92±0.06ab 0.61±0.06ac 0.45±0.04abcd 40.356＜0.001

表3 健康大鼠和冠心病大鼠血清肿瘤坏死因子α（TNF-α）、单核细胞趋化蛋白-1（MCP-1）、细胞间黏附分子-1（ICAM-1）水平比较/（pg/mL，±s）

表3 健康大鼠和冠心病大鼠血清肿瘤坏死因子α（TNF-α）、单核细胞趋化蛋白-1（MCP-1）、细胞间黏附分子-1（ICAM-1）水平比较/（pg/mL，±s）

注：与健康组相比，aP＜0.05；与单纯模型组相比，bP＜0.05；与速效救心丸组相比，cP＜0.05；与速效救心丸+奥替普拉组相比，dP＜0.05健康组

组别健康组单纯模型组速效救心丸组速效救心丸+奥替普拉组奥替普拉组F值P值ICAM-1 21.03±1.89 58.58±3.41a 35.48±1.26ab 53.82±2.17ac 66.42±2.73abcd 589.332＜0.001鼠数10 10 10 10 10 TNF-α 18.57±2.15 38.27±1.36a 24.69±1.53ab 35.23±1.65ac 43.42±1.59abcd 367.933＜0.001 MCP-1 36.85±2.16 83.78±4.35a 47.25±2.28ab 78.29±4.62ac 92.39±4.84abcd 399.393＜0.001

2.4速效救心丸对大鼠血管内皮指标的影响与健康组相比，单纯模型组一氧化氮、PGI2水平显著降低，ET-1水平升高（P＜0.05）。速效救心丸组一氧化氮、PGI2水平显著高于单纯模型组，ET-1水平显著低于单纯模型组；奥替普拉组一氧化氮、PGI2水平显著低于单纯模型组，ET-1水平显著高于单纯模型组（P＜0.05）。速效救心丸+奥替普拉组ET-1水平显著低于奥替普拉组，一氧化氮、PGI2水平显著高于奥替普拉组（P＜0.05）。见表4。

2.5HE染色观察大鼠心肌组织病理形态学变化健康组大鼠心肌细胞排列整齐、紧密，细胞质染色均匀，细胞核形态正常，心肌纤维排列整齐，未发生炎症细胞浸润；单纯模型组心肌细胞排列紊乱，细胞质染色不均匀，细胞肥大，细胞核变形，伴有大量炎症细胞浸润，细胞间隙变宽，心肌纤维排列紊乱，心肌纤维萎缩。与单纯模型组相比，奥替普拉组心肌组织病理损伤更为严重，速效救心丸组心肌组织损伤明显得到缓解，炎症细胞浸润程度减轻，细胞形态部分恢复正常。见图1。

表4 健康大鼠和冠心病大鼠血清一氧化氮、内皮素-1（ET-1）、前列环素I2（PGI2）水平比较/± s

表4 健康大鼠和冠心病大鼠血清一氧化氮、内皮素-1（ET-1）、前列环素I2（PGI2）水平比较/± s

注：与健康组相比，aP＜0.05；与单纯模型组相比，bP＜0.05；与速效救心丸组相比，cP＜0.05；与速效救心丸+奥替普拉组相比，dP＜0.05健康组

PGI2/（ng/L）152.52±10.69 123.63±11.23a 136.44±12.27ab 126.59±11.13ac 125.32±10.84abcd 212.847＜0.001组别健康组单纯模型组速效救心丸组速效救心丸+奥替普拉组奥替普拉组F值P值鼠数10 10 10 10 10一氧化氮/（μmol/L）42.68±2.66 28.58±1.53a 36.43±1.65ab 27.24±2.32ac 23.52±1.84abcd 143.176＜0.001 ET-1/（ng/L）4.32±0.87 11.63±1.84a 7.18±1.57ab 11.24±1.73ac 12.76±1.45abcd 53.811＜0.001

2.6速效救心丸对大鼠心肌组织细胞凋亡影响与健康组（0.00±0.00）%相比，单纯模型组心肌组织细胞凋亡率（46.72±4.37）%显著升高（P＜0.05）。速效救心丸组细胞凋亡率（15.66±3.51）%显著低于单纯模型组；奥替普拉组细胞凋亡率（62.88±8.35）%显著高于单纯模型组（P＜0.05）。速效救心丸+奥替普拉组细胞凋亡率（42.76±5.16）%显著低于奥替普拉组（F＝250.867，P＜0.001）。见图2。

2.7速效救心丸对大鼠心肌组织HIF-1α/BNIP3通路蛋白表达的影响与健康组相比，单纯模型组心肌组织HIF-1α、BNIP3蛋白表达显著升高（P＜0.05）。速效救心丸组HIF-1α、BNIP3蛋白表达显著低于单纯模型组；奥替普拉组HIF-1α、BNIP3蛋白表达显著高于单纯模型组（P＜0.05）。速效救心丸+奥替普拉组HIF-1α、BNIP3蛋白表达显著低于奥替普拉组（P＜0.05）。见图3，表5。

图3 蛋白质印迹法检测健康大鼠和冠心病大鼠HIF-1α、BNIP3蛋白表达情况：A为健康组；B为单纯模型组；C为速效救心丸组；D为速效救心丸+奥替普拉组；E为奥替普拉组

2.8速效救心丸对大鼠心肌组织凋亡蛋白表达的影响与健康组相比，单纯模型组Bcl-2蛋白表达显著降低，Bax、caspase-3蛋白表达升高（P＜0.05）。速效救心丸组Bcl-2蛋白表达显著高于单纯模型组，Bax、caspase-3蛋白表达显著低于单纯模型组；奥替普拉组Bcl-2蛋白表达显著低于单纯模型组，Bax、caspase-3蛋白表达显著高于单纯模型组（P＜0.05）。速效救心丸+奥替普拉组Bcl-2蛋白表达显著高于奥替普拉组，Bax、caspase-3蛋白表达显著高于奥替普拉组（P＜0.05）。见图4，表6。

表5 健康大鼠和冠心病大鼠缺氧诱导因子-1α（HIF-1α）、Bcl2/腺病毒E1B相互作用蛋白3（BNIP3）蛋白表达比较/± s

表5 健康大鼠和冠心病大鼠缺氧诱导因子-1α（HIF-1α）、Bcl2/腺病毒E1B相互作用蛋白3（BNIP3）蛋白表达比较/± s

注：β-actin为β-肌动蛋白。与健康组相比，aP＜0.05；与单纯模型组相比，bP＜0.05；与速效救心丸组相比，cP＜0.05；与速效救心丸+奥替普拉组相比，dP＜0.05健康组

BNIP3/β-actin 0.19±0.04 0.32±0.03a 0.26±0.03ab 0.36±0.04ac 0.46±0.06abcd 60.581＜0.001组别健康组单纯模型组速效救心丸组速效救心丸+奥替普拉组奥替普拉组F值P值鼠数10 10 10 10 10 HIF-1α/β-actin 0.35±0.04 1.12±0.15a 0.49±0.06ab 1.06±0.17ac 1.37±0.26abcd 76.799＜0.001

图4 蛋白质印迹法检测健康大鼠和冠心病大鼠Bax、Bcl-2、caspase-3蛋白表达情况：A为健康组；B为单纯模型组；C为速效救心丸组；D为速效救心丸+奥替普拉组；E为奥替普拉组

表6 健康大鼠和冠心病大鼠心肌组织中Bcl-2相关X蛋白（Bax）、B细胞淋巴瘤/白血病-2（Bcl-2）、半胱氮酸天冬氨酸蛋白酶-3（caspase-3）蛋白表达比较/± s

表6 健康大鼠和冠心病大鼠心肌组织中Bcl-2相关X蛋白（Bax）、B细胞淋巴瘤/白血病-2（Bcl-2）、半胱氮酸天冬氨酸蛋白酶-3（caspase-3）蛋白表达比较/± s

注：β-actin为β-肌动蛋白。与健康组相比，aP＜0.05；与单纯模型组相比，bP＜0.05；与速效救心丸组相比，cP＜0.05；与速效救心丸+奥替普拉组相比，dP＜0.05健康组

caspase-3/β-actin 0.31±0.03 0.54±0.05a 0.42±0.04ab 0.52±0.06ac 0.91±0.09abcd 153.144＜0.001组别健康组单纯模型组速效救心丸组速效救心丸+奥替普拉组奥替普拉组F值P值鼠数10 10 10 10 10 Bax/β-actin 0.21±0.05 0.34±0.03a 0.28±0.04ab 0.32±0.06ac 0.44±0.05abcd 32.072＜0.001 Bcl-2/β-actin 0.83±0.06 0.36±0.05a 0.68±0.07ab 0.38±0.06ac 0.25±0.04abcd 183.488＜0.001

3 讨论

冠心病主要以脂质沉淀、炎症细胞浸润及纤维组织增生等为病理特征的慢性疾病，病人病情加重可发展为心肌梗死，其中脂质代谢异常以及过度炎症反应贯穿于冠心病发展整个过程［7］。本研究构建冠心病模型发现，大鼠ST段升高，血清中三酰甘油、总胆固醇水平明显升高，HDL降低，提示大鼠出现冠状动脉痉挛发生心肌缺血，且血脂水平代谢异常。TNF-α可介导多种炎症反应，一定程度上可反映动脉粥样硬化程度［8］。MCP-1可调控单核细胞与巨噬细胞迁移至斑块，造成斑块的不稳定性。炎症反应与内皮细胞功能损伤有关，内皮功能损伤后造成炎症因子水平升高［9］，本研究发现模型大鼠TNF-α、MCP-1、ICAM-1、ET-1水平显著升高，一氧化氮、PGI2水平降低，提示大鼠存在炎症反应及内皮功能不全。组织学检测发现单纯模型组心肌细胞排列紊乱，细胞质染色不均匀，细胞肥大，细胞核变形，伴有大量炎症细胞浸润，细胞间隙变宽，心肌纤维排列紊乱，心肌纤维萎缩，表明模型大鼠发生严重心肌损伤、心肌炎症反应。以上均符合以往冠心病模型大鼠基本特征，提示模型复制成功。

速效救心丸中重要的中药成分为冰片、川芎，药理学研究显示川芎具有扩张冠状动脉，增加冠状动脉血流，改善心功能，抗氧化等功效；冰片具有消炎、镇痛，降低心肌耗氧量等功效［10］。临床研究显示，速效救心丸对冠心病心血瘀阻证稳定型心绞痛具有一定的改善作用，同时降低机体炎症损伤［11］。动物研究发现速效救心丸能够降低冠心病大鼠LDL，升高HDL，进而抑制动脉粥样硬化斑块的形成［12］。本研究发现速效救心丸干预后可明显降低模型大鼠三酰甘油、总胆固醇、TNF-α、MCP-1、ICAM-1、ET-1水平，升高HDL、一氧化氮、PGI2水平，组织学发现大鼠心肌组织损伤明显得到缓解，炎症细胞浸润程度减轻，心肌细胞形态部分恢复正常，提示速效救心丸可平衡冠心病大鼠血脂水平，减轻内皮功能损伤，缓解心肌组织损伤，关于其具体机制，目前尚不明确。

HIF-1α为缺氧反应的重要调控因子，常规氧状态下可通过泛素连接酶E3泛素化降低，维持细胞中较低水平的HIF-1α，低氧环境下则通过抑制E3水平的泛素进而上调细胞中HIF-1α水平。研究发现缺氧缺血状态下心肌细胞损伤与冠心病、心脏手术病人不良预后有关［13］。基础研究显示下调HIF-1α表达可降低低氧条件诱导的心肌细胞凋亡。冠心病病人HIF-1α水平与病人心肌缺血程度有关，且HIF-1α可影响血清血管内皮生长因子（VEGF）水平。HIF-1α介导的细胞凋亡机制较复杂，目前多数认为HIF-1α可能通过上调促凋亡蛋白发挥对缺氧细胞的凋亡作用［14］。BNIP3为Bcl-2家族BH3-only亚家族促凋亡蛋白，BNIP3为HIF-1α的目的基因，基础研究发现在缺氧诱导的心肌细胞中，BNIP3为100个缺氧诱导基因中上调表达最为显著的基因之一，提示其可能参与HIF-1α介导的心肌细胞凋亡过程［15］。本研究发现模型大鼠心肌组织中HIF-1α、BNIP3蛋白表达明显升高，心肌细胞凋亡率明显升高，进一步检测凋亡相关蛋白发现心肌组织中Bax、caspase-3蛋白表达升高，Bcl-2蛋白表达降低；而经速效救心丸治疗后HIF-1α、BNIP3蛋白表达明显降低，心肌细胞凋亡率也降低，Bax、caspase-3蛋白表达降低，Bcl-2蛋白表达升高，推测速效救心丸诱导心肌凋亡的降低可能与其对HIF-1α/BNIP3通路的抑制有关。为验证这一推测，本研究采用奥替普拉处理模型大鼠发现，经奥替普拉处理后，大鼠心肌组织学损伤更严重，且血脂、炎性因子水平均显著高于单纯模型组，心肌组织中HIF-1α、BNIP3表达水平以及心肌组织细胞凋亡率均明显高于单纯模型组，提示HIF-1α过表达能够加重冠心病大鼠炎症反应，扰乱血脂平衡，并进一步破坏内皮功能，加重心肌损伤。进一步采用速效救心丸治疗奥替普拉处理的模型大鼠，则能够显著缓解心肌组织及内皮功能损伤，降低炎症反应，恢复血脂平衡，降低心肌细胞凋亡，提示速效救心丸能够通过抑制HIF-1α/BNIP3通路的活化，调节冠心病的血脂水平、炎症反应，改善大鼠内皮功能损伤、心肌细胞凋亡。

综上所述，速效救心丸能够通过抑制HIF-1α/BNIP3信号通路活化，减轻冠心病炎症反应、内皮损伤，调节血脂平衡，减少心肌组织细胞凋亡，从而发挥对冠心病大鼠的保护作用。速效救心丸的这一新发现可能为冠心病临床治疗提供新思路。然而冠心病的发生机制较复杂，速效救心丸是否可能通过HIF-1α/BNIP3信号通路下游其它途径减轻心肌组织损伤，还有待后续深入研究。

（本文图1，2见插图6-1）

图1 健康大鼠和冠心病大鼠心肌组织病理形态学变化（HE染色×100）：A为健康组；B为单纯模型组；C为速效救心丸组；D为速效救心丸+奥替普拉组；E为奥替普拉组

图2 健康大鼠和冠心病大鼠心肌组织凋亡情况（TUNEL法×100）：A为健康组；B为单纯模型组；C为速效救心丸组；D为速效救心丸+奥替普拉组；E为奥替普拉组