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亚低温液体与常温液体对高温高湿环境下失血性休克大鼠复苏效果的对照研究

2020-06-15施冬冬陈前芬覃燕律武贵林陈伯成

世界最新医学信息文摘 2020年43期
关键词:存活率休克直肠

施冬冬,陈前芬,覃燕律,武贵林,陈伯成*

(1.广西医科大学第二临床医学院,广西 南宁;2.解放军第923 医院麻醉科,广西 南宁)

0 引言

高温高湿环境会产生不利于机体的情况,如体温上升、水电解质失衡、体温调节中枢紊乱、心血管系统损伤、炎症介质聚集等,从而致使运动能力下降、疲劳,引起机体损伤[1]。持续热暴露会使机体热休克,严重影响机体正常的生理功能,有报道称高温诱导的热休克是热环境下动物死亡的重要原因,死亡率可高达17%~80%[2]。在高温高湿环境下出现HS 时,为保证组织的灌流供血,机体代偿性增加心脏做功,提高心率以增加心输出量[3-4],高负荷和高代谢会进一步加重机体损伤,及早的进行补液是治疗的关键。程新等[5-6]人研究认为在休克早期低温液体(4℃)复苏可有效降低高温高湿环境大鼠体温、抑制炎症介质释放,可以改善高温高湿环境下大鼠HS 的复苏效果。HS 时往往需要尽快地补液维持循环系统,但较低的温度液体快速进入体内会使机体的凝血功能、血小板等改变[7],同时低温补液技术的其他危险因素和并发症尚不清楚。到目前为止,现有的文献中缺乏对亚低温液体治疗HS 的报道,本实验采用亚低温液体(12±1.5)℃对高温高湿环境下HS 大鼠复苏,旨在评估此补液方式可行性以及复苏效果,以期为高温高湿环境下HS 的治疗研究提供理论依据。

1 材料和方法

1.1 实验动物

3 月龄健康SD 雄性大鼠24 只(由广西医科大学实验动物中心提供),普通环境下饲养,体重相仿(280±20)g。将24 只SD 雄性大鼠HS 造模成功后随机分为两组,每组12 只,对照组:为常温液体组,液体温度控制在(23±1.5)℃;观察组:为亚低温液体组,液体温度控制在(12±1.5)℃。

1.2 主要实验器械及试剂

BL-420S 型生物机能实验系统(成都泰萌有限公司生产),海尔空调(青岛海尔空调电子有限公司生产),取暖器(奥德尔实业有限公司生产),温湿度计(济南仁硕电子科技有限公司生产),水合氯醛(上海化学试剂公司生产),4%多聚甲醛PBS 溶液(武汉博士德生物有限公司生产),乳酸钠林格试液、0.9%生理盐水(福州迈新生物技术开发有限公司生产)。

1.3 实验方法

1.3.1 HS 模型建立

取健康SD 大鼠24 只,实验前将大鼠常规禁食6 小时,自由饮水。后将大鼠暴露在气象条件为干球温度(37±0.5)℃,相对湿度(65±5)%的高温高湿环境中,大鼠可以自由活动预适应环境。采用Wigger’s 改良法制备失血性休克大鼠模型,大鼠予10%水合氯醛腹腔注射麻醉,剂量为0.32mL/100g,仰卧固定于鼠板上。大鼠右侧颈动脉,左侧股静脉插管放置24G 留置针,连接三通,导管及三通内充满肝素。右侧颈动脉插管处进行放血及平均动脉压(Mean arterial pressure,MAP)等血流动力学指标监测;股静脉用于回输液体,维持血压及建立休克稳定后补液通道;热暴露开始至热暴露60min,予电子温度计每隔10min 测量大鼠直肠温度。置管操作后待大鼠血压稳定,自颈动脉快速放血至MAP 40mmHg(1mmHg=0.133kPa),将放出的血液装入无菌储血瓶中。随后20 min 内若MAP 高于45mmHg 则缓慢放血,若MAP 低于25mmHg 则自股静脉缓慢输入自体血,使MAP 维持在35±5mmHg。从热暴露开始至20min 内建立好失血性休克模型。

表3 两组大鼠热暴露下直肠温度比较(℃)

1.3.2 液体复苏

将500mL 生理盐水预先放入冰箱冷藏至12℃维持,接普通输液管,将液体与输液管一同放入自制的保温装置中,再将受保护的输液管与大鼠股静脉相连接,热暴露20min 内制备成功高温高湿环境下HS 大鼠,模型建立成功后开始回输自体血,并输入2 倍量的乳酸钠林格溶液,输液泵控制回输速度均为1.5mL·kg-1·min-1持续,对照组采用(23±1.5)℃乳酸钠林格溶液,观察组采用(12±1.5)℃乳酸钠林格溶液。

1.3.3 观察指标

比较两组大鼠3h 平均存活时间(min)及3h 存活率(%)。选择液体复苏30min 后,分别从大鼠颈动脉采取1mL 血测血清LD值(pg/mL)。热暴露开始(0min),每隔10min 记录大鼠直肠温度至热暴露60min。

1.4 统计学方法

采用SPSS 22.0 统计软件对两组观察指标进行比较,3h 存活时间、30min LD 值、直肠温度采用均数±标准差表示,行t 检验,3h 存活率(%)表示,行χ2检验;检验水准均设为P<0.05,表示两组间差异有统计学意义。

2 结果

2.1 比较两组HS 大鼠3 小时存活时间和存活率

液体复苏后3h 时,观察组存活时间高于对照组,观察组大鼠存活率为83.3%(10/12)明显优于对照组33.3%(4/12),两组大鼠3h 存活时间和存活率比较差异具有统计学意义(t=8.401,P<0.05;χ2=6.671,P=0.013),见表1。

表1 两组大鼠3h 存活时间,min)、存活率(n,%)与比较

表1 两组大鼠3h 存活时间,min)、存活率(n,%)与比较

组别 存活时间(min) 存活数(只) 死亡数(只) 存活率观察组 147.08±13.60 10 2 83.3对照组 85.44±21.44 4 8 33.3统计值 t=8.401 χ2=6.671 P 值 P<0.05 P=0.013

2.2 比较两组大鼠复苏后30min 时血清LD 值

观察组血清LD 值为(2.59±0.50)pg/mL 较对照组(4.75±0.95)pg/mL低,差异有统计学意义(t=-6.387,P<0.05),见表2。

表2 两组大鼠液体复苏后30min 时血清LD 值比较

2.3 热暴露下大鼠直肠温度

热暴露开始(0min),每隔10min 监测大鼠直肠温度,见表3。输入不同温度液体间差别有统计学意义(P<0.05),观察组大鼠直肠温度低于对照组;受热暴露时间影响,热暴露后,大鼠直肠温度逐渐升高;随着热暴露时间的延长,观察组和对照组大鼠直肠温度升高幅度不同,对照组大鼠直肠温度升高幅度较大。

3 讨论

正常人的体温受体温调节中枢所调控,并通过神经、体液因素使产热和散热过程在一定条件下呈动态平衡,使机体保持在相对恒定的体温范围内[8]。体温过高会导致机体代谢增加,疾病也因此预后不良甚至导致死亡[9]。失血量超过全身总血量的20%时,机体会出现休克表现,刺激机体释放过量炎症介质形成“瀑布样”连锁放大反应。组织缺血缺氧引起代谢性酸中毒,影响了细胞各种膜的屏障功能,细胞膜受损后引起通透性增加及细胞膜上离子泵的功能衰竭。此时,为保证组织的灌流供血,机体代偿性增加心脏做功,提高心率以增加心输出量[3,10]。此时如不及时补充有效循环血量,各个脏器得不到及时的供氧,最终导致各个脏器不同程度损害。高温高湿环境下,机体的综合代谢率提高,产热与散热失衡,较易发生内环境紊乱,同时机体对休克后的应激抵抗能力也相应降低,导致在发生失血性休克后机体的损伤更加严重和复杂。机体不仅有效循环血量锐减,全身各脏器灌注不足,机体深部的体温也难以散发[11],早期的补液对于休克复苏来说极为关键。

3.1 静脉输注液体温度、速度及制剂

目前国内外对于亚低温的定义指的是用于机体的核心温度,通常为28~36℃[12-14]。但对于亚低温液体的概念,目前尚未有人定义,生活中通常认为常温液体为15~25℃,从现有的文献研究来看,低温液体的温度基本控制在0~10℃(通常采用4℃)[15],因此本实验中将10~15℃液体定义为亚低温液体,行HS 大鼠液体复苏时,观察组液体温度维持在(12±1.5)℃,对照组液体维持在(23±1.5)℃。大部分研究者在对成人高热降温的研究中仍沿用40~60 滴/min 的速度[16],被认为是安全的,但对于存在HS 因素需要快速补液的情况下,过快的输液速度会刺激血管壁,影响血小板、凝血功能。本研究中采用输液泵控制回输速度为1.5mL·kg-1·min-1,以达到液体复苏的目的。输注的液体选择以单纯的溶酶的乳酸钠林格液,其优点是进行有效的循环灌注,可以代替部分输血以维持循环稳定[17]。

3.2 HS 大鼠的造模

本实验采用改良Wigger’s 法通过在高温高湿环境下进行HS大鼠造模,在之前的研究中,已经证明这种模型成功可行[5-6]。但对于大鼠而言,血管细小,采用4℃液体输注时血管收缩痉挛发生率较高,影响输液效果,因此本研究采用亚低温液体进行研究,观察3h 存活时间(min)、存活率(%)、30min 时的血清LD 值,复苏60min 内核心体温变化。

3.3 观察指标分析

高温高湿环境可加重失血性休克的病理变化,增加炎症介质的释放,引起机体发生炎症反应,产生生理性应激。有实验显示,失血性休克大鼠进入高温高湿环境后,随着肛温的升高,外周热感受器及控制心脏活动的神经元件的神经反射作用、中枢温热感受器血液温度变化对心脏的影响使心率明显加快,呼吸频率也代偿性增加,超过了机体的代偿能力,加速了动物的死亡[18]。本研究中,在高温高湿环境下,失血性休克造模成功后,以相同速度分别输入亚低温及常温液体,动态监测大鼠直肠温度的变化,结果显示,当输入亚低温液体时,大鼠直肠温度逐渐升高;随着热暴露时间的延长,观察组和对照组大鼠直肠温度升高幅度不同,对照组大鼠直肠温度升高幅度较大。许多学者表示,当机体发生休克时,组织缺血缺氧引起体内LD 升高,若长时间持续高水平的血清LD,通常患者预后越差[19]。故检测血清LD 浓度可判断全身无氧代谢的状况,它是高度反映组织缺氧的敏感指标之一。当本实验液体复苏30min 时,观察组死亡1 例,对照组死亡5 例,对存活的大鼠血清LD 值分析观察组低于对照组,提示亚低温液体复苏可以更好的改善组织缺氧状态。液体复苏3h 时观察组HS 大鼠生存时间和存活率优于对照组,说明在高温高湿环境下亚低温液体复苏效果要优于常温液体组。

3.4 研究的局限性

(1)本实验中所选用大鼠数量较少,对于存活率的研究还需要更大量的数据支撑,其次大鼠对于高温高湿环境下休克的耐受能力不佳,如果选用新西兰大白兔可能更好。(2)比较了亚低温液体组[液体温度维持在(12±1.5)℃]及常温液体组[液体温度维持在(23±1.5)℃]两组的复苏效果,但未能更准确筛选出合适的液体温度范围。(3)仅对两组不同温度液体补液30min 后大鼠血清LD 的比较,没有对补液后更长时间的LD 值以及其他炎症指标进行监测,无法体现出两组不同温度液体复苏后炎症指标动态变化过程。

4 结论

综上所述,亚低温液体在高温高湿环境下对HS 大鼠复苏,具有一定的可行性和较好的效果。随着全球气候变暖,在高温高湿环境下作业时,机体由于产热与散热失衡,体温中枢调节障碍,人体核心体温迅速上升,对于创伤失血性休克,此时快速降低人体核心体温与快速补充血容量纠正休克同等重要。亚低温液体复苏能补充血容量的同时,有效降低人体核心温度,改善组织缺氧状态,有效保护脑细胞,其在高温高湿环境下休克时的使用前景值得期待。

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