陈奕嘉，李金燕，欧阳帅，罗莉霞

0引言

细胞极性(cell polarity)是指细胞中的亚细胞(subcellular)结构或者分子沿着某个或某几个轴向呈不对称分布，包括顶端-基底极性(apico-basal polarity，ABP)和平面细胞极性(planar cell polarity，PCP)[1-2]。晶状体发育早期，胚胎细胞不同的分化命运赋予了晶状体特殊的“细胞极性”，这种细胞极性在晶状体的发育过程中起到了重要的作用。在晶状体发育过程中，PCP的形成是决定晶状体正常形态和透明度的关键环节，其对晶状体上皮细胞的延长和纤维细胞的规律排列起重要作用[3]。本文结合目前该领域研究进展就PCP在维持晶状体的正常发育中的作用进行详细综述。

1 PCP的建立

PCP指极性细胞在同一组织平面上统一的规则排列，其方向与ABP方向垂直[2]。PCP主要由两个分子系统调控，包括“核心(core)”和“Fat-Dachsous(Ft-Ds)”PCP通路[4]。近几年来，普遍认为PCP的建立由三个部分组成：(1)整体的极性信号；(2)特异性极性蛋白的不对称分布；(3)极性信息的输出[4-5]。最新的一项假设提出，与ABP仅涉及单个细胞内分子的分布调控不同，PCP通路导致细胞内的分子不对称分布，结果进一步影响相邻细胞的极性方向，从而使多个细胞间极性方向一致[6]。

1.1 PCP成分的不对称性PCP成分的不对称分布是建立PCP的基础。PCP成分的不对称性一旦消失或随机排列，可使细胞极性紊乱、细胞结构沿组织轴错位[7]。这种不对称分布在脊椎动物的器官发生过程中表现并不总是那么明显，但在个别器官如肾脏中仍然可以观察到[8-9]。

“核心”PCP通路由多通道跨膜蛋白Frizzled(Fz)、Van Gogh(Vang；脊椎动物中为Vang-like/Vangl)和Starry night(Flamingo/Fmi；脊椎动物中为Celsr)以及胞质成分Dishevelled(Dsh；哺乳动物中为Dvl)、Diego(Dgo；脊椎动物中为Inversin/Diversin)和Prickle(Pk)组成，它们的分布呈高度保守，即细胞的一侧分布Fz、Dsh和Dgo，另一侧分布Vang和Pk[10-12]，Fmi位于细胞两侧，并在相邻细胞之间形成二聚体连接Fz和Vang[13]。众所周知，极性蛋白的不对称分布是细胞极性形成的必要条件。在细胞中，上述蛋白质分别组合为Fz-Dsh-Fmi和Vang-Pk-Fmi两种复合体，呈不对称分布。这种不对称分布依赖于它们在细胞内的相互排斥以及在细胞间的相互作用[14]。

Ft-Ds通路的成分包括钙粘蛋白Fat(Ft)和Dachsous(Ds)以及高尔基体固有跨膜激酶Four-jointed(Fj)[15]。Ft和Ds分别聚集在细胞的对立两侧，也呈不对称分布。与Wnt/PCP系统不同的是，Ds和Fj在果蝇翅膀上的分布呈相反的浓度梯度，Fj在翅原基(wing disc)浓度最高，并随径向距离线性减少，而Ds的分布浓度随成形素(morphogen)浓度变化而变化，但始终在翅膀最狭窄的部位保持最高浓度[16]。

1.2整体极性信号整体的极性信号是形成PCP的前提，但它们的性质以及在组织中如何协调极性等关键问题一直尚未解决[5，17]。有证据表明，组织中的机械力以及细胞重排可引起细胞沿组织轴规则排列[18-19]。此外，极性信号分子浓度梯度的形成在提供极性信号方面也起着关键作用[5，20]。

目前认为，Wnt蛋白家族为其中一种整体极性信号分子，但仍有很多尚未解决的问题。Wnt蛋白家族与Fz家族受体(以及其他受体)结合，使膜受体Fz形成活性梯度，为PCP提供方向信息[21]。现已证实，Wnt5a、Wnt7a和Wnt11可以调控脊椎动物的PCP[22-23]，但这一过程是否具有必要性尚不清楚。最新研究表明，在同一水平面上，Wnt5a沿前-后极形成从低到高的浓度梯度，可使细胞极化，从而引导细胞内PCP蛋白的极性分布[24]。

Ft-Ds-Fj和核心PCP信号是平行关系还是上下游关系一直存在争议[25-26]。研究发现，哺乳动物中Dchs1和Fat4的同源基因都可以影响PCP通路[27]，人类Fat4甚至可以挽救因果蝇Ft突变产生的PCP异常表型[28]。以上观点表明，Ft-Ds-Fj也为PCP提供了整体的极性信号。但最新研究表明，在果蝇腹部虽然发现Ft-Ds-Fj和核心PCP通路之间存在共同调控基因，但这两个通路是互相独立的，不存在上下游关系[29]。

1.3极性信息的输出通常细胞的信号输出需要依靠核糖核酸(ribonucleic acid，RNA)的转录，但目前尚未发现PCP信号的效应依赖于转录过程。目前研究认为，极性信息可通过对细胞骨架动力和顶端肌动球蛋白收缩力的调控、驱动细胞运动从而产生效应。

Wnt蛋白家族至少可以通过两条途径来激活下游效应分子(包括小G蛋白、Rac、Rho、JNK等)，从而调动骨架蛋白。Wnt配体与细胞表面的Fzd受体结合后，Dvl被招募到细胞膜[30]。随后，Dvl继续招募细胞质蛋白(如Daam)，这些蛋白促进GTPases的激活，并通过Rho激酶(ROCK)使得肌球蛋白轻链(pMLC)激活肌球蛋白，使肌球蛋白相关的粘着连接沿着一定方向开始收缩，引起细胞的定向运动[31]。此外，在Wnt5a诱导下，Fzd与Ror2形成复合物，Dvl2磷酸化并聚合，随后激活JNK磷酸化关键肌动蛋白调节因子，从而引起细胞的定向运动[32-33]。

然而，Ft-Ds-Fj究竟是如何建立极性，目前尚不清楚。有研究认为，Ft可通过调控非经典肌球蛋白Dachs的膜定位而建立极性[34]。此外，Ft还可以和Atrophin结合，共同调节微管组织中心的平面排列，使极化细胞定向迁移[35-36]。

2 PCP在晶状体发育中的作用

现已证实，PCP在晶状体发育中起重要作用[37]。研究表明，在无脊椎动物和脊椎动物中，中心粒/纤毛的不对称分布是PCP通路在晶状体生长发育中起作用的有力证据[38]。晶状体的发育分为晶状体泡的产生和晶状体纤维的分化两个阶段。其中，晶状体细胞形态的分化依赖肌动蛋白、微管等多种细胞骨架成分的参与[39]。在脊椎动物中，尽管Ft-Ds-Fj在某些器官(如肾脏)形态形成方面起作用，但其在PCP过程中是否真正发挥作用的证据相当有限[40-41]，尚需进一步探索。

2.1晶状体泡的形成从胚胎第22d开始，小鼠间脑前部两侧的神经褶不断内陷形成视泡(optic vesicle)；胚胎第31d左右，视泡与表皮外胚层接触，接触部位的表皮外胚层增厚形成晶状体板(lens placode)；随后晶状体板内陷，形成晶状体杯(lens pit)，并逐渐脱离表皮外胚层；胚胎第33d，晶状体杯完全脱离表皮外胚层，形成晶状体泡(lens vesicle)[37，42]。晶状体板内陷的分子机制已经有了不少相关研究。在晶状体杯中发现了细胞粘着连接复合物(adherence junction complexes，AJC)，其由参与肌动球蛋白收缩的分子RhoA、Rock、Shroom3和p120-catenin组成，上述分子与肌动球蛋白和钙粘蛋白连接，通过磷酸化并激活非肌球蛋白，导致顶端细胞间的连接长度减少，最终引起晶状体杯顶端收缩(apical constriction)。另外，AJC在晶状体杯中呈平面极性分布[43]，与晶状体基板的形态发生有关。Muccioli等[44]发现在晶状体板开始内陷时，基板细胞极性方向一致，统一朝向晶状体板的中心点，共同拮抗Cdc42介导的连接收缩(junctional contraction)。

2.2晶状体纤维细胞的分化晶状体泡形成后，前部细胞逐渐分化为晶状体上皮细胞。后部上皮细胞向前部伸长，分化成初级晶状体纤维，从而逐渐将晶状体泡填满[45]。在出生后的晶状体中，只有在赤道部生发区的上皮细胞才有增殖和分化能力，这些细胞可以不断增殖并分化成次级晶状体纤维[42]。成熟晶状体的前部覆盖着一层单层上皮细胞，其余部位均分布不同分化阶段的纤维细胞。次级晶状体纤维在伸长和分化过程中，逐渐失去所有细胞器，形成高度对称的细胞结构[46]。

晶状体上皮细胞的正常形态是其分化为晶状体纤维细胞的基本前提条件。同时，上皮细胞在维持晶状体形态和透明度中也起关键作用。有研究发现，在Sfrp2过表达小鼠的晶状体中，呈六边形的正常中央上皮细胞减少，方形或三角形排列的上皮细胞增多。Smurf可以调节核心PCP通路，其中Smurf2在调节PCP方面的作用更为显著[47]。Narimatsu等[48]发现Smurf2敲除后，小鼠出现一系列PCP缺陷的现象，包括上皮细胞六边形形态的破坏。最新研究表明，Fmi对于上皮细胞正常形态的形成也是必不可少的[49]。此外，Chauhan等[50]发现，PCP通路效应分子Rac1和RhoA的相互拮抗作用决定了小鼠晶状体发育模型中上皮细胞的形状和晶状体曲率，RhoA和Rac1分别平衡调节细胞的宽度和长度，共同决定了晶状体上皮细胞的形态。

晶状体上皮细胞分化为纤维细胞的过程由许多生长因子诱导，其中成纤维细胞生长因子(FGF)是关键的诱导因子，其在整个生命过程中负责建立并维持晶状体的细胞极性[51-52]。FGF主要通过与特定的细胞表面受体酪氨酸激酶(RTK)结合而发挥作用。Sef、Sprouty(Spry)和Spred都是关键的RTK拮抗剂，因此可作为FGF的抑制剂[53]。研究指出，Sef、Spry和Spred可通过影响FGF信号转导而影响晶状体纤维细胞的分化，从而影响后续PCP的建立和晶状体的正常发育。晶状体中过表达Sef后，初级和次级纤维细胞伸长过程被破坏，使晶状体表型变小[54]。同样，Spry过表达影响了小鼠晶状体纤维细胞的分化，从而导致晶状体变小[55]。另外，丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)/细胞外调节激酶1/2(ERK1/2)信号通路的磷酸化及激活是FGF诱导的晶状体纤维分化所必需的。研究发现，Spred和Spry激活可以抑制ERK1/2的磷酸化，以阻断FGF在晶状体细胞中的信号传导[56-57]。由此推测，当纤维细胞需要激活更多ERK1/2来进行分化时，会下调或减少纤维细胞中Spred的表达，以继续细胞极性的形成以及晶状体的发育[57]。

晶状体上皮细胞和纤维细胞的分布区域受到严格的调控，以维持晶状体在生长和老化期间的大小。正常晶状体上皮细胞必须局限于晶状体的前表面[58]。Jones等[59]选择性敲除小鼠睫状体色素上皮中原纤蛋白Fbn1后，在异位晶状体中发现，上皮细胞过度生长，分布于整个晶状体，且前后表面均覆有增殖能力的细胞，认为异位晶状体的组织极性受到干扰，同时所有突变小鼠中的晶状体均小于同年龄匹配组。提示我们极性与晶状体大小之间可能存在关系。

2.3细胞骨架的调控PCP下游信号分子Rho GTPase家族分子(如Rho、Rac、Cdc42)是调节细胞迁移的核心元件[60]，在小鼠晶状体中敲除RhoA和Rac1会引起纤维肌动蛋白细胞骨架的紊乱，从而干扰晶状体细胞极性信号的输出，使得晶状体出现发育缺陷。Maddala等[61]发现，Rac1敲除的小鼠晶状体形态严重异常，其中肌动蛋白细胞骨架缺陷伴有Rac GTPase效应蛋白表达下调，提示Rac GTPase通过调控肌动蛋白细胞骨架，在晶状体形态的建立和维持中起重要作用。Sahu等[62]成功构建了Rac/Rho下游效应器RLIP76过表达小鼠，发现小鼠晶状体的正常发育受损，体积较正常晶状体小，猜想是由于肌动蛋白细胞骨架被破坏而引起。由此可见，PCP下游信号分子在晶状体的发育和成熟过程中起着重要作用。

3问题与展望

晶状体细胞的增殖和分化是一个受到各通路精细调控的复杂生物学过程，多种信号分子及其构成的通路网络参与调控。随着对关键生长因子信号通路及其在晶状体发育过程中的认识不断加深，我们面临着寻找新的角度来解读这些信号通路的挑战。然而，目前对晶状体中PCP信号通路的研究较少。PCP信号通路对晶状体细胞的规则排列起着重要作用，对晶状体的透明度、曲率、大小的维持起到关键作用。晶状体透明度和正常形态都是形成良好视觉质量的必要前提。由于PCP信号通路对晶状体发育的每一个过程都有着精确调控作用，所以对PCP信号通路中各种蛋白相互作用的分子机制仍需进一步探索阐明。PCP信号转导通路下游效应分子之间是如何协同或独立发挥作用？Wnt/PCP信号通路如何与其他信号通路协同作用，调控晶状体正常发育？整体极性信号的具体调控机制有哪些？上述问题均需要深入研究，从而在更深层次阐明PCP对晶状体发育的调控机制。这些问题对于解决晶状体疾病有着重大意义，同时，也有望成为研究如何完善再生晶状体的新方向。