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新型双肾常温机械灌注保存装置的应用分析

2019-01-30高新谱张玮晔史源范鹏飞王清平沈中阳天津医科大学天津300070天津市第一中心医院天津30019中国人体器官捐献管理中心北京100010

实用器官移植电子杂志 2018年6期
关键词:空泡肾小管变性

高新谱,张玮晔,史源,范鹏飞,王清平,沈中阳(1.天津医科大学,天津 300070;.天津市第一中心医院,天津 30019;3.中国人体器官捐献管理中心,北京 100010)

近年来,公民逝世后器官捐献(donated after circulatory death,DCD)成为解决国内器官短缺的主要途径,由于部分类型的边缘供肾热缺血时间较长,导致热缺血损伤较重[1-3],肾移植术后植入功能不良(poor graft function,PGF)、延迟性移植物恢复功能(delayed graft function,DGF)等并发症发生率不断增加,也对传统经典UW液静息低温保存技术(static cold storage,SCS)提出了新的挑战,SCS保存技术已无法满足日益增长的临床需求,因此,需要研发新型器官保存技术以满足临床实际需求[4-6]。本研究通过稳定的猪自体肾移植模型,研究常温机械灌注(normothermic machine perfusion,NMP)保存技术对猪DCD供肾活力评估、提高供肾保存质量的意义及其相关机制。

1 资料和方法

1.1 选用由蓟县实验动物基地提供得成年雄性小型猪10只,体重30~35 kg,术前禁食24 h,禁水8 h。所有动物处置遵照天津市《实验动物管理条例》。按照保存方式不同随机分为2组,实验组(NMP保存组,n=5):热缺血30 min后获取供肾,NMP保存7 h后,行自体肾移植术;对照组(SCS保存组,n=5):热缺血30 min后获取供肾,4℃低温环境下,UW静息保存7 h后行自体肾移植术。

1.2 供体手术:麻醉诱导采用3%戊巴比妥钠1 ml/kg,气管插管,呼吸机维持呼吸。正中切口逐层入腹,游离双肾动脉、肾静脉,输尿管置管引流。肝素化(500 U/kg)10 min后获取供体血液200 ml,存储于血袋备NMP保存使用。热缺血30 min后获取双侧肾脏,使用4℃UW液(2000 U/L肝素)1000 ml灌注,然后根据不同保存方法进行保存。

1.3 保存方法及装置:对照组采用500 ml UW液4℃低温保存。实验组NMP循环保存液包括200 ml全血,300 ml生理盐水,300 ml低分子右旋糖苷-40,水溶性维生素10 ml,5%碳酸氢钠20 ml,地塞米松10 ml,还原性谷胱甘肽600 mg,复合氨基酸30 ml,注射用头孢哌酮钠舒巴坦钠1.5 g,12 500 U肝素,10 ml葡萄糖酸钙。根据血气分析结果添加碳酸氢钠。维持灌注压力40~70 mmHg(1 mmHg=0.133 kPa),氧流量0.5 L/min,37℃环境。

1.4 自体肾移植:在肾脏保存结束后重新麻醉及气管插管,Satinsky钳阻断下腔静脉及腹主动脉,采用端-侧缝合分别将肾静脉连续缝合在下腔静脉,将肾动脉与腹主动脉连续缝合,静脉推注500 mg甲强龙后,并使用胶体液快速输注,维持血压在100 mmHg以上,其后开放血流,供、受体输尿管使用6~0 Proline线侧-侧连续缝合重建,逐层关腹,拔除颈动脉插管,留置中心静脉导管,便于术后输液采血。待肌力恢复、自主呼吸后拔除气管插管,放回饲养笼并持续补液。术后3 d,每天给予头孢塞夫(3 mg/kg)、甲硝唑500 mg预防感染。术后每天观察尿量并补液。

1.5 术后标本采集及观察指标:在各时间点比较两组动物术后移植肾血清肌酐水平、炎症因子表达、凋亡、肾皮质微循环、术后7 d生存率等指标。

1.6 统计学方法:实验结果采用SPSS 18.0统计软件进行分析。计量资料以均数±标准差(x±s)形式表示,使用t检验或方差分析比较各组样本均数,计数资料采用卡方检验。生存分析采用K-M生存曲线。P<0.05认为差异有统计学意义,P<0.01认为有显著性差异。

2 结 果

2.1 手术基本情况(表1):动物体重、供肾重量、供肾热缺血时间、供肾保存时间、手术时间、血管重建时间等指标,两组间比较差异均无统计学意义(P>0.05)。

两组供肾经历30 min热缺血颜色深暗,表面呈灌注不均花斑状表现(图1A),NMP灌注保存1 h后肾脏颜色红润且均匀一致(图1B),对照组供肾始终为花斑状。移植肾血流开放后,实验组移植肾脏,迅速恢复颜色红润且均匀一致,很快有尿液产生(图1C),对照组移植肾脏恢复较慢,颜色偏暗呈灌注不均状(图1D),少尿或无尿。

表1 两组小型猪自体肾移植的基本情况

图1 供肾热缺血30分钟(A);NMP保存中(B);实验组血流开放后(C);对照组血流开放后(D)

2.2 灌注期间相关指标变化:实验组灌注期间双肾灌注压力稳定(图2),灌注流量稳定(图3),双肾尿量逐渐增加(图4)。

图2 灌注保存期间左肾(A)及右肾(B)动脉灌注压力变化

图3 灌注保存期间左肾(A)及右肾(B)动脉灌注流量变化

图4 灌注保存期间左肾(A)及右肾(B)尿量变化

2.3 自体肾移植术后血清肌酐检测(表2):自体肾移植术后1 d,对照组血清肌酐水平较实验组明显升高,术后3、7 d,实验组血清肌酐水平逐渐降低,接近正常,对照组恢复缓慢,两组间比较差异有统计学意义(P<0.05)。

表2 自体肾移植术后血清肌酐水平变化

2.4 肾组织常规病理检查:热缺血30 min后,肾小管局灶性凝固性坏死,肾小管呈中度水样变性、空泡变性。实验组保存1 h后空泡变性、水样变性明显减轻,保存2、3、4、5、6、7 h各时间点供肾损伤无明显加重,空泡变性较轻,肾小管无明显损伤。对照组1 h后空泡变性、水样变性明显,损伤较重。3、4、5、6、7 h各时间点供肾损伤逐渐加重,出现弥漫性滴状变性及空泡变性,并出现肾小管扩张损害。

术后24 h实验组及对照组移植肾病理(图5)。实验组移植肾皮质炎症反应较轻,髓质透明管型较少,肾小球形态相对正常,对照组炎症反应重,髓质管型较多,肾小球形态异常。

图5 自体肾移植后24 h,移植肾穿刺活检病理(HE染色,放大20倍),炎症反应(如*所示)及透明管型(如箭头所示)

2.5 肾组织免疫组化

2.5.1 肾动脉开放后24 h肾组织ET-1表达(图6):肾组织ET-1免疫组化,实验组开放后24 h ET-1阳性表达明显低于对照组,半定量评分分别为(2.42±0.57)比(6.65±1.87)(P<0.05),两组间相比差异具有统计学意义。

2.5.2 肾动脉开放后24 h肾组织caspase-3表达(图7):自体肾移植术后24 h移植肾caspase-3阳性表达明显低于对照组,半定量评分分别为(9.06±2.31)比(16.90±4.25)(P < 0.05),两组间相比具有统计学差异。

图7 术后24 h肾组织caspase-3表达半定量评分

2.6 肾组织TUNEL法凋亡检测:开放后肾组织TUNEL法凋亡定量法检测,实验组开放后24 h凋亡细胞阳性率,较对照组明显降低,分别为(9.62±2.59)% 比(32.20±5.93)%(P< 0.05),两组间相比差异有统计学意义。

2.7 肾皮质微循环血流监测(图8):移植后24 h实验组单位面积内肾皮质血流明显高于对照组,分别为(2 983.83±360.83)比(780.53±143.38) BPU(P<0.05),两组间相比亦有统计学差异。

2.8 术后1周生存率比较:5只对照组动物术后1周存活率分别为100%(5/5)。5只实验组动物存活亦超过7 d,术后1周存活率为100%(5/5),与对照组相比差异无统计学意义(P>0.05)。

图8 肾动脉开放后24 h肾皮质微循环监测

3 讨 论

3.1 NMP对DCD供肾的保护作用:在缺血缺氧的低温环境下,代谢底物缺乏。氧供缺乏导致细胞ATP供应由无氧酵解产生,生成丙酮酸、乳酸导致细胞质及线粒体基质pH值降低,ATP耗竭导致钠-钾ATP泵功能异常,破坏细胞膜及线粒体功能,导致线粒体膜通透性转换及细胞色素C释放入细胞质激活凋亡途径[7],并导致开放后中性粒细胞及血小板聚集于窦状隙,最后导致开放后肝窦微循环血流明显降低,甚至局部完全无血流[8]。NMP是在生理环境下保存供体器官,彻底改变了传统低温保存的理论[9],NMP对DCD供肾具有一定修复作用[10-11]。

本研究结果证实相对与UW液SCS低温保存,NMP对DCD供肾的保存具一定优势,证据如下:自体肾移植术后1 d,对照组血清肌酐水平较实验组明显升高,实验组术后3、7 d,实验组血清肌酐水平逐渐下降,接近正常,对照组恢复缓慢。热缺血30 min后,肾小管局灶性凝固性坏死,肾小管呈中度水样变性、空泡变性。NMP组保存后空泡变性、水样变性明显减轻,UW液组各时间点供肾损伤逐渐加重,出现弥漫性滴状变性及空泡变性,并出现肾小管扩张损害。虽然两组生存率无统计学差异,但是样本量偏少,需要进一步实验证实对移植物生存率及受体生存率影响。

3.2 NMP对DCD供肾的保护作用具体机制:本研究证实,NMP保存通过降低肾组织ET-1表达改善供肾微循环,减轻微循环紊乱,实验组开放后24 h ET-1阳性表达明显低于对照组。移植术后24 h实验组单位面积内肾皮质血流明显高于对照组。肾微循环障碍与ET-1水平升高有密切关系,ET-1可以强烈持久的收缩肾小球出、入球动脉,造成时肾皮质微血管强烈收缩,微循环障碍,从而影响肾实质的血液灌注,加上低温、缺血、缺氧共同加重肾脏损伤[12-15]。

本研究中,NMP保存DCD供肾始终处于生理环境,而且始终保持血管切应力,不仅避免了冷缺血对微循环的影响,通过降低肾组织ET-1表达及改善微循环,改善供肾血供,进而改善术后移植肾脏功能。

本研究还证实NMP通过降低caspase-3水平减少肾实质细胞凋亡,实验组开放后24 h caspase-3阳性表达明显低于对照组。开放后肾组织TUNEL法凋亡定量法检测结果,自体肾移植术后24 h凋亡细胞阳性率,实验组较对照组明显降低。本实验中NMP保存组移植后24 h,实验组不仅肾组织caspase-3阳性表达明显低于对照组,而且肾实质细胞凋亡率明显下降,因此可证实NMP通过降低caspase-3水平减少肾实质细胞凋亡。

3.3 总结及本研究局限性:本研究成功建立双肾NMP保存装置,可明显减轻DCD供肾保存损伤及缺血/再灌注损伤,其保护机制涉及降低肾组织ET-1表达及改善供肾微循环,降低caspase-3水平及凋亡减轻缺血/再灌注损伤。本研究局限性:① 样本量较少;② 自体模型缺少免疫因素;③ 观察时间较短;④ 损伤机制不全面,例如细胞因子释放、炎症细胞浸润、ATP耗竭等;⑤ 7 h保存时间尚需延长;⑥ 需要和HMP保存技术对比;⑦ 装置需要进一步优化与工业设计。在未来研究中将克服这些局限及缺陷。

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