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新型硫化氢供体GYY4137对大鼠肾缺血再灌注损伤的保护作用

2018-11-06胡丽饶婷段丹段菲黄焱琼蒋品

安徽医药 2018年11期
关键词:肾小管肾脏细胞

胡丽,饶婷,段丹,段菲,黄焱琼,蒋品

(1.英山县人民医院麻醉科,湖北 黄冈 438700;2.武汉大学人民医院泌尿外科,湖北 武汉 433000)

缺血再灌注损伤(IRI)是临床上比较常见的病理生理过程,经常发生于失血性休克、肾移植、大血管手术等[1]。其机制比较复杂,可能与氧化应激、钙离子超载、炎性因子参与、细胞凋亡、一氧化氮含量变化等多因素有关。硫化氢(H2S)是近年来发现继一氧化氮(NO)及一氧化碳(CO)之后的第三种内源性气态信号分子,在体内以H2S/硫氢化钠(NaHS)的形式保持动态平衡[2]。GYY4137作为一种新型的H2S供体,在生理的pH和温度条件下可缓慢分解和释放H2S[3]。因此,本研究旨在研究GYY4137在肾脏IRI过程中的保护作用及机制。

1 材料与方法

1.1实验试剂及器材GYY4137为Sigma 公司产品;血肌酐(Scr)、尿素氮(BUN)为美国贝克曼LX20型全自动生化分析仪检测;丙二醛(MDA)、超氧化物岐化酶(SOD)检测试剂盒为南京建成生物工程研究所生产;原位细胞凋亡检测试剂盒为德国罗氏生物技术有限公司生产; RNA提取试剂盒及反转录试剂盒为威佳科技有限公司生产。

1.2实验动物与分组研究时间为2015年6月至2016年6月。健康雄性成年Wistar大鼠45只,体质量250~300 g,购于湖北省疾病预防控制中心,所有实验均获武汉大学动物实验伦理委员会批准。所有动物饲养在饲养于武汉大学人民医院实验动物中心,自由进食、进水。大鼠按随机数字表法分为以下3组,每组15只:(1)对照组(A组):以2%浓度戊巴比妥钠,50 mg·kg-1腹腔注射麻醉,暴露左侧肾脏,仅游离左侧肾蒂,不给予任何干预措施,暴露45 min 后缝合切口;(2) 缺血再灌注(B组):使用无损伤动脉夹闭左侧肾蒂,45 min后取下动脉夹再灌注,肉眼观察肾脏由暗红色变为鲜红色,说明肾脏再灌注成功,缝合切口关腹;(3)缺血再灌注+GYY4137组(C组):手术方法同B组保持一致,再灌注同时腹腔注射GYY4137(100 μmol·kg-1)。

1.3取材与标本制备所有大鼠在灌注后24 h,快速脱颈椎法处死所有大鼠,快速采集左侧肾脏组织标本。一半组织固定于4%多聚甲醛用于组织学检查,另一半组织放置液氮中冷冻后转入-80 ℃冰箱保存。

1.4苏木精和伊红(HE)染色用生理盐水将左侧肾脏组织冲洗干净后,置于4%的甲醛溶液中固定,常规石蜡包埋,常规石蜡包埋后4 μm厚切片,经脱蜡、水化,HE染色后封片。

1.5血液Scr、BUN、SOD、MDA测定采集各组的血液标本,用生化分析仪测定各组Scr、BUN含量。MDA含量采用硫代巴比妥酸法测定,SOD活性采用黄嘌呤氧化酶法,操作按照说明书指示进行。

1.6细胞凋亡检测生精细胞凋亡检测采用末端脱氧核苷酸转移酶介导的dUTP缺口末端标记(TUNEL)法,细胞核染成棕黄色者为TUNEL阳性细胞,光镜下(×200)每张切片选取10个视野。生精细胞的凋亡指数(AI)=阳性细胞数/细胞总数×100%。

1.7反转录聚合酶链反应(RT-PCR) 采用Trizol法提取肾脏组织样本总RNA,依产品说明书取RNA 1 μg反转录成cDNA。反应条件为:反转录50 ℃ 15 min,95 ℃ 40 s;循环条件为:92 ℃ 30 s、55 ℃ 15 s、70 ℃ 45 s,40个循环(预变性,变性,退火,延伸)。引物序列:caspase-3正义链5′-TGGACTGCGGTATTGAGACA-3′,反义链5′-GCGCAAAGTGACTGGATGAA-3′;Bax正义链5′TGAACTGGACAACAACATGGAG3′,反义链5′AGCAAAGTAGAAAAGGGCA-ACC3′;Bcl-2正义链5′TTTGATTTCTCCTGGCTGTCT3′,反义链5′CTGATTTGACCATTT GCCTG3′;GAPDH正义链5′TGCTATGTTGCCCTAGAC3′,反义链5′GTTGGCATA GAGGTCTTTACGG3′。实验测定所得Ct值即为mRNA表达水平,用2-△△Ct法得出各组样品mRNA相对表达水平。

2 结果

2.1肾脏组织的病理学改变A组未见明显的组织病理学改变,肾小管上皮细胞无变性坏死;B组可见肾小管扩张和充血,肾小管上皮细胞水肿和坏死;与B组相比,C组可见肾小管上皮细胞损伤减轻,可见部分肿胀、变性和细胞脱落。见图1。

2.2肾脏组织中Scr、BUN、MDA、SOD含量的变化B组中MDA、Scr、BUN含量较A组明显增加,GYY4137治疗后,C组的MDA、Scr、BUN含量较B组显著降低(P<0.05),B组,C组和A组比较均差异有统计学意义(P<0.05);与A组相比,B组SOD活性明显降低,GYY4137治疗后增加了肾脏组织中SOD的活性, C组较B组活性显著增加(P<0.05),B组,C组和A组比较均差异有统计学意义(P<0.05),具体数据见表1。

2.3肾小管上皮细胞凋亡情况A组可见较少的、散在的肾小管上皮细胞凋亡,凋亡指数(4.58±0.43)%;B组中凋亡细胞显著增加,染色阳性细胞以远端肾小管上皮细胞多见,凋亡指数为(23.52±1.87)%,与A组相比差异有统计学意义(P<0.05);C组细胞凋亡较B组明显减少,凋亡指数为(10.86±0.87)%,差异有统计学意义(P<0.05)。见图2。

2.4肾脏组织中Bax、Bcl-2和caspase-3mRNA的表达水平Bax、caspase-3在B组中的mRNA表达水平,与A组比较显著增加,GYY4137治疗后,Bax、caspase-3在C组中的mRNA表达水平较B组有所降低,B组,C组和A组比较均差异有统计学意义(P<0.05);Bcl-2在A组中mRNA表达水平明显高于B组和C组,B组,C组和A组比较均差异有统计学意义(P<0.05)。见图3。

3 讨论

H2S已被证实是一种有效的分子,在肾脏IRI过程中具有保护作用[4]。目前为止,在广泛的生物和药理实验中,NaHS通常作为H2S的供体,在水中溶解后短时间内释放出大量的H2S,很难达到持续稳定的治疗效果[3];而GYY4137作为一种新型的H2S供体,其特点是缓慢释放H2S并能维持相对稳定的浓度,可更加有效的模拟体内H2S的释放过程[5]。Meng等[6]研究发现GYY4137处理后,可明显增加心脏射血分数,减少缺血面积,从而对IRI大鼠心肌产生保护作用;Tang等[7]报道了GYY4137在大鼠急性肺损伤的病理过程中发挥抗炎的作用。本实验通过组织学观察可见IRI组出现明显的病理学和形态学上的变化,经GYY4137治疗后明显改善了肾脏IR组织学损伤。

氧化应激是内源性促氧化因子及反应活性氧(ROS)的过度产生,为众多疾病致细胞功能障碍及组织损伤的病理生理机制[8-9]。IRI过程中伴有ROS的产生,而后者促进了IRI引起的损伤。正常情况下,SOD是体内重要抗氧化酶,能通过消除多余的ROS起到细胞保护作用,其抗氧化能力可改善IRI; MDA是脂质过氧化反应的稳定终产物,通常用来评价氧化应激条件下细胞的损伤程度[10]。BUN和Scr是人体内代谢的产物,是评价肾功能常用的指标。肾功能损伤后,肾小球滤过率下降,肾脏失去代偿能力,将导致后血液中BUN、Scr升高。本研究表明,GYY4137处理后可明显使IRI肾脏组织中氧化应激水平降低,从而减轻肾脏功能的损伤。

越来越多的研究表明,细胞凋亡在肾脏IRI的病理过程中有重要的作用[11]。IRI可刺激内皮细胞炎症信号级联反应,释放氧自由基,使机体ROS过度生成,最终导致细胞特异性凋亡,使机体发生损伤[12-13]。很多研究指出细胞凋亡的途径主要有内在(线粒体)和外在(死亡受体)两条信号转导通路[14-15]。在肾脏IRI过程中,诱导细胞凋亡的主要是线粒体信号转导通路。正常情况下,caspase-3一般以酶原的形式存在,是半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶中重要的组成部分,同时也是最关键的下游凋亡蛋白酶的汇聚点[16]。当细胞接受凋亡刺激时,caspase-3被激活,通过信号转导引起细胞底物的降解而诱导凋亡[17-18],其激活是通过一系列的信号转导通路之间的相互作用决定的,其中抗凋亡因子Bcl-2和促凋亡因子Bax起到了关键的作用[19],其变化是细胞凋亡损伤中另一个重要的因素[20]。本实验IRI组中,凋亡水平明显高于对照组;经GYY4137治疗后,凋亡水平显著降低。以上实验结果表明GYY4137在肾脏IRI过程中发挥抗凋亡的作用。

表1 肾脏组织中Scr、BUN、MDA、SOD含量的变化

注:与A组比较,aP<0.05;与B组比较,bP<0.05

注:与A组比较,aP<0.05;与B组比较,bP<0.05

图3肾脏组织中Bax、Bcl-2和caspase-3 mRNA的表达水平

综上所述,GYY4137可发挥抗凋亡和抗氧化作用,从而在肾脏组织IRI过程中发挥功能恢复的作用。虽然GYY4137的保护作用所涉及的机制仍有待充分阐明,但GYY4137可以代表一个易于使用的、安全的、有效的新方法,对损伤的肾脏进行保护。

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