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高温漆酶的克隆表达及其性能的研究

2017-06-29俞青霞吕斌葛珏希

东方教育 2017年8期
关键词:性能

俞青霞+吕斌+葛珏希

摘要:漆酶(laccase),是一种典型的绿色催化剂,应用范围广泛。目前工业化的漆酶商品主要来源真菌发酵,但在高温、高盐或强碱性等极端环境中,真菌漆酶易失活,限制了其应用范围。相比之下,细菌漆酶具有耐高温、耐高碱性的优势,且发酵生产周期短,具有广阔的推广前景。现归纳近年来关于产漆酶菌株的分离、漆酶的克隆表达等研究成果,对高温漆酶的克隆表达和性能研究对于拓展漆酶的范围、深入地进行高温漆酶的理论研究,指出高温漆酶良好的开发前景,以此来扩大漆酶的应用范围。

关键詞:高温漆酶;克隆表达;性能

漆酶(Laccase, p-diphenoldioxygen:oxidoreductase, EC 1.10.3. 2),即p-对苯二酚:双氧氧化还原酶,是一种多酚类氧化还原蛋白,属于蓝多铜氧化酶家族(bluemulticopperoxid- oreductase, BMCOs)[1]。漆酶具有特殊的催化性能和非常宽泛的底物专一性,能够利用多种酚类化合物及其衍生物、芳香胺及其衍生物等为氢供体,以O2为电子受体,催化底物氧化使之生成相应的苯配和水,是一种环境友好的绿色催化剂[2]。

漆酶的底物非常广泛,主要是酚类化合物、芳胺类、芳香梭酸类、甾体激素及生物色素、金属有机化合物等[3, 4]。因此,漆酶可以用来处理木质素、酚类污染物、农药、除草剂等,在环境保护、造纸工业、食品工业等领域具有很大的研究和应用价值,另外,利用漆酶进行药物的修饰加工、功能高分子材料的合成也是近年来研究的热点之一[5],热稳定性较好的漆酶因在污水处理、功能高分子的合成等领域具有独特的应用价值而倍受关注[6, 7]。

1.获取耐高温漆酶的基因片段

提取嗜热芽孢杆菌DNA;设计引物,获得仅表达高温漆酶的基因片段,并用PCR技术进行扩增;将基因片段连接到载体上,并转入表达型大肠杆菌细胞(BL21);测序,验证所获片段是否为耐高温片段;分离纯化BL21表达的蛋白,该蛋白即为高温漆酶。

2.高温漆酶的耐受温度范围及最适反应温度

高温漆酶最适反应温度为60℃,该高温漆酶在20℃-90℃均具备活性。但因为温度梯度以10℃为间隔,根据曲线趋势观察,最适反应温度也有可能介于50℃-60℃之间。

3.高温漆酶的耐受pH范围

经测量可知,高温漆酶在4-11pH值的条件下酶活大小有较大变化,在4.0、5.0、9.0、10.0和11.0的条件下,高温漆酶的酶活几乎接近于0%,而在pH值为7.0时相对酶活达到最大。可知高温漆酶的pH耐受范围为5.0-9.0,最适pH反应条件为7.0。

4.抑制剂、有机溶剂对高温漆酶的活性影响

4.1抑制剂对高温漆酶的活性影响

抑制剂对酶活的影响如表1所示。三种抑制剂中DDT对高温漆酶的一直效果最显著,DDT浓度为0.1mmol/L时就可以使得酶活性降低90%以上;EDTA对高温漆酶具有一定程度的抑制作用,但抑制作用不是非常明显,在浓度为100mmol/L时,残余酶活性仍旧能够达到50%以上;SDS对高温漆酶不仅没有较强的抑制作用,反而对酶活有一定的促进作用,当SDS浓度为10mmol/L时,酶活性仍有升高现象。

4.2有机溶剂对高温漆酶的活性影响

根据测量可知,高温漆酶的活性随着有机溶剂浓度的升高而降低。三种有机溶剂中,丙酮和乙醇对高温漆酶活性的影响比甲醇要大,当乙醇和丙酮的浓度达到20%时,高温漆酶的残余酶活就下降到了50%以下。

5.结论

通过研究发现,高温漆酶最适反应温度为60℃,该高温漆酶在20℃-90℃均具备活性;高温漆酶的pH耐受范围为5.0-9.0,最适pH反应条件为7.0;DDT对高温漆酶的一直效果最显著,DDT浓度为0.1mmol/L时就可以使得酶活性降低90%以上;EDTA对高温漆酶具有一定程度的抑制作用,但抑制作用不是非常明显,在浓度为100mmol/L时,残余酶活性仍旧能够达到50%以上;SDS对高温漆酶不仅没有较强的抑制作用,反而对酶活有一定的促进作用,当SDS浓度为10mmol/L时,酶活性仍有升高现象。

高温漆酶的活性随着有机溶剂浓度的升高而降低。三种有机溶剂中,丙酮和乙醇对高温漆酶活性的影响比甲醇要大,当乙醇和丙酮的浓度达到20%时,高温漆酶的残余酶活就下降到了50%以下。此高温漆酶对结晶紫和靓红有很强的脱色效果,此高漆酶酶的酶学性质表明此酶具有一定的工业化应用价值。

参考文献:

[1]Galhaup C, Goller S, Peterbauer CK, Strauss J, Haltrich D. Characterization of the major laccaseisoenzyme from Trametespubescens and regulation of its synthesis by metal ionsa[J]. Microbiology. 2002,148(7): 2159-2169.

[2]陶亮亮. 重组里氏木霉产耐髙温漆酶的研究 [D]. 杭州: 浙江大学. 2014.

[3]Baldrian P. Fungal laccases–occurrence and properties [J]. FEMS microbiology reviews. 2006,30(2):215-242.

[4]宋安东, 王艳婕, 王松江, 戚元成, 吴坤. 漆酶的分子生物学研究及其应用[J]. 信阳师范学院学报: 自然科学版. 2004,17(2):244-248.

[5]Riva S. Laccases: blue enzymes for green chemistry[J]. TRENDS in Biotechnology. 2006,24(5):219-226.

[6]Chairattanamanokorn P, Imai T, Kondo R, Ukita M, Prasertsan P. Screening thermotolerant white-rot fungi for decolorization of wastewaters[J]. Applied biochemistry and biotechnology. 2006,128(3):195-204.

[7]Kiiskinen LL, R?tt? M, Kruus K. Screening for novel laccase‐producing microbes[J]. Journal of applied microbiology. 2004,97(3):640-646.

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