宋军民 杨 超 常 远 夏坤锟 王朝杰 (郑州大学第一附属医院肛肠外科，河南 郑州 450050)

结肠癌是常见的发生于结肠部位的消化道恶性肿瘤〔1〕，但是关于结肠癌迁移与侵袭的机制目前认识尚有限。近来，越来越多的研究支持miRNAs与肿瘤相关〔2，3〕。有研究发现 micro(miR)-126在不同结肠癌细胞株中转染前后表达水平不同，提示miR-126有可能与结肠癌有一定关系。本文通过稳定表达miR-126的结肠癌细胞系了解miR-126的表达及其对结肠癌细胞生物学行为的影响。

1 材料与方法

1.1 一般资料 收集2013年1月至2014年1月在我院肿瘤科确诊为结肠癌并且行手术治疗的患者80例，每例患者术前均未进行放化疗。男46例，女34例，年龄38～55〔平均(47.0±2.5)〕岁;高分化14例，中分化51例，低分化15例;Dukes分期:A期12例，B期22例，C期31例，D期15例;有淋巴结转移38例，无淋巴结转移42例。所有组织于离体15 min内置于液氮罐中保存。

1.2 细胞系、载体及试剂 人结肠癌细胞系SW480、人胚肾细胞株(HEK293T)。慢病毒表达载体pGIPZ、慢病毒包装质粒pCD/NL-BHDDD、慢病毒膜蛋白表达质粒 pLTRG。Lipofectamine2000，快速限制性内切酶 CLai、MLui、T4DNA 连接酶，八肽胆囊收缩术(CCK-8)试剂盒、DMEM培养液、hsa-miR-126原位杂交探针。胎牛血清，总RNA提取液，胰岛素受体底物(IRS)-1兔单克隆抗体。

1.3 方法

1.3.1 细胞培养 将SW480结肠癌细胞株在含有10%进口胎牛血清的RPMI1640培养基中37℃、5%CO2饱和湿度贴壁传代培养，在细胞生长状态良好时(取对数生长期)用于实验。

1.3.2 RT-PCR检测 利用总RNA提取液，严格按照提取液操作说明书提取结肠癌组织和癌旁组织中总RNA，cDNA的制备按照 All-in-one miRNA qRT-PCR Detectionkits，反应体系:RNA 2 μg，poly A polymerase(2.5 U/μl，1 μl)，RTase Mix 1 μl，5×反应缓冲液 5 μl，加 H2O至终体积 25 ml。反应条件:37.5℃ 90 min，80℃ 5 min，25℃保存。实施定量PCR的反应体系同样按照All-in-one miRNA qRT-PCR Detectionkits说明书进行，反应条件:预期变性90℃ 10 min，90℃ 10 s，退火60℃ 30s。

1.3.3 miR-126慢病毒表达载体构建 利用Primes软件设计引物，同时引入CLai、MLui酶切位点及引物的序列及末端的保护碱基。引物序列正义:5'-CGACGCGTCGGGTTTACAGAACACCCATCA-3'，反义:5'-CCATGGGGCCACAGCAACAAAAGACT-3'，扩增的片段长度为357 bp。以正常黏膜组织基因组DNA为模板，PCR扩增miR-126。PCR成功扩增出包含miR-126前体及侧翼序列的DNA片段，将扩增后片段利用2%琼脂糖进行凝胶电泳直至没有出现杂质带，然后对PCR产物纯化回收。由CLai、MLui酶切的PCR产物与pGIPZ载体连接，然后再经过转化，于无菌操作台中挑选单个克隆放入培养基中并摇菌过夜，对目的片段经PCR鉴定正确的菌液进行质粒提取制备小量质粒，鉴定出的阳性质粒经过DNA测序后得到pGIPZ-miR-126重组质粒。

1.3.4 细胞转染 严格按照Lipofectamine2000试剂说明书操作，采用阳离子脂质体法进行病毒包装。转染前24 h，将处于对数生长期的HEK293T接种于6孔培养板中，每孔2×105个细胞。使用含10%进口胎牛血清的高糖型DMEM细胞培养基在37℃、5%CO2条件下培养24 h，待细胞融合度到70%～90%后进行病毒包装，分为 pGIPZ-miR-126转染组、空白对照组(pGIPZ)。将两组病毒上清分别感染SW480细胞，感染72 h后，荧光显微镜下观察到感染成功的细胞中绿色荧光蛋白(GFP)发绿色荧光，成功转染细胞后利用流式细胞仪分选GFP阳性的SW480细胞。分选的细胞纯度达95%以上，然后置于37℃ 5%CO2的培养箱中培养。

1.3.5 CCK-8检测结肠癌细胞的增殖能力 在96孔板中按每孔2×103细胞配制100 ml的细胞悬液，每组设3个复孔，在37℃ 5%CO2的条件下将培养板在培养箱预培养24 h;向培养板各加入10 ml转染组与对照组细胞;将培养板在培养箱孵育一段适当的时间后，向每孔加入10 ml CCK-8溶液，将培养板在培养箱内继续孵育2 h;取细胞转染后12 h、24 h、48 h三个时间点进行CCK-8检测，使用酶联免疫检测仪在450 nm波长处测定其吸光度，重复3次。

1.3.6 划痕实验观察细胞迁移能力 将两组细胞分别接种于6孔板，放入37℃ 5%CO2培养箱中孵育。待长至临近饱和时，用10 μl微量移液头消毒后在细胞板上垂直划痕，用磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤细胞3次，去除划下的细胞，加入无血清培养基。倒置显微镜下每隔24 h观察各组细胞的迁移情况并拍照。

1.3.7 Transwell实验观察细胞侵袭能力 小室接种细胞前2 h将基质胶Matrigel用无血清的RPMI1640培养基稀释成浓度为1∶5，每个小室加50 μl，放入37℃ 5%CO2培养箱中孵育2 h;接种200 μl无血清培养基细胞(5×105/ml)，下室加入600 μl含10%胎牛血清的RPMI 1640培养液。37℃ 5%CO2条件下培养24～48 h后，取出Transwell小室，弃去孔中培养液，用PBS洗涤2次，4%多聚甲醛固定下室面，结晶紫染色，用棉签轻轻擦掉上层未迁移细胞，用PBS洗涤。显微镜下随机选取4个高倍视野计数穿过膜的细胞数，并计算平均值。实验重复3次。

1.4 统计学方法 利用SPSS16.0软件进行χ2及t检验。

2 结果

2.1 荧光定量PCR检测miR-126在结肠癌组织中表达 结肠癌组织中miR-126表达阳性率显著低于癌旁正常黏膜组织(P＜0.05)。见表1。并且，miR-126的表达与年龄、性别及分化程度无明显相关性(P＞0.05)，与结肠癌临床分期、有无淋巴结转移显著相关(P＜0.05)。见表2。

表1 miR-126在结肠癌和癌旁正常黏膜中的表达〔n(%)〕

表2 miR-126表达与结肠癌患者临床特征的相关性分析(n)

2.2 miR-126表达对结肠癌细胞生物学行为的影响

2.2.1 miR-126表达对SW480细胞生长的影响 随培养时间的延长，转染组细胞增殖能力明显低于空白对照组。见表3。

表3 miR-126对SW480细胞增殖的影响〔±s，n=3，L/(g·cm)〕

表3 miR-126对SW480细胞增殖的影响〔±s，n=3，L/(g·cm)〕

12 h 24 h 48 h对照组组别0.325±0.010 0.449±0.012 0.738±0.017转染组 0.265±0.008 0.335±0.007 0.366±0.012 t/P值8.115/0.001 14.213/0.000 23.517/0.000

2.2.2 miR-126表达对SW480细胞迁移能力的影响 对SW480两组细胞划痕处理后，间隔24 h连续观察细胞的迁移情况，可见空白对照组划痕72 h后，细胞已基本完全覆盖划痕区域，而转染组则未完全覆盖。表明miR-126具有抑制结肠癌细胞迁移的能力。

2.2.3 miR-126表达对SW480细胞侵袭能力的影响 铺有基质胶的细胞培养36 h后，转染组及空白对照组细胞迁移至下室的细胞个数分别为(10±4.81)个和(262±31.26)个;无基质胶的细胞在培养36 h后计数迁移至下室的细胞数目，转染组和空白对照组分别为(81±14.27)个和(341±24.23)个，差异均具有统计学意义(P＜0.05)。

3 讨论

结肠癌是临床上最常见的恶性肿瘤之一，严重威胁着人类的生命和健康，发生侵袭转移为其主要死因。MicroRNA(miRNA)是一类由内源基因编码的长度约为22个核苷酸的非编码小分子单链RNA，它们在动植物中参与转录后基因表达调控，导致靶基因在 mRNA水平降解或引起蛋白翻译抑制〔4～6〕。miRNAs在细胞增殖、迁移、侵袭、基因调控及肿瘤的转移等多种生物过程中起着十分重要的作用〔7，8〕。在分析这些miRNA分子的生物学功能时，发现miR-126与多种肿瘤的发生发展密切相关，并有研究报道其在结肠癌组织中表达下调〔9〕。前期研究发现，miR-126具有抑制结肠癌细胞增殖、迁移及侵袭的能力，可见在结肠癌发生侵袭转移的过程中miR-126发挥举足轻重的作用〔10，11〕。本实验结果说明miR-126可以明显抑制细胞增殖，发挥抑制肿瘤生长的作用。同时，miR-126可抑制结肠癌细胞迁移能力及侵袭能力，发挥抑制结肠癌侵袭转移的功能。综上所述，在结肠癌中存在miR-126表达下调，其下调与结肠癌是否发生侵袭转移密切相关。体外实验也证实miR-126可通过抑制结肠癌细胞增殖、转移与侵袭而发挥抑瘤作用，为结肠癌转移抑制性miRNA。

1 于 洋.结肠癌围手术期的护理体会〔J〕.辽宁医学院学报，2013;34(4):89-90.

2 邓振宇，冯字鹏，何小科.miR-183作用于Ezrin抑制结肠癌细胞侵袭和迁移的研究〔J〕.中国现代普通外科进展，2014;17(3):169-72.

3 陈 芳，周 畅，陆艳霞，等.Hsa-miR-186在结肠癌细胞中的表达及作用〔J〕.南方医科大学学报，2013;33(5):654-60.

4 蒋 波，关 旭，蒋耀昌，等.23例左半结肠癌、直肠癌并肠梗阻患者术中结肠灌洗分析〔J〕.宁夏医科大学学报，2011;33(11):1095-6.

5 吴春蓉，李生陆，罗治彬.微小RNA-451对结肠癌细胞侵袭能力的影响〔J〕.重庆医学，2010;39(14):1813-5.

6 孟庆友，王文斌，蔡志新，等.miR-126对内皮祖细胞增殖和迁移的影响以及靶基因的检测〔J〕.中华普通外科杂志，2013;28(8):611-4.

7 Manikandan J，Aarthi JJ，Kumar SD，et al.Oncomirs:the potential role of non-coding microRNAs in understanding cancer〔J〕.Bioinformation，2008;2(8):330-4.

8 Pichler M，Winter E，Stotz M，et al.Down-regulation of KRAs-in-teracting miRNA-143 predicts poor prognosis but not response to EGFR-targeted agents in colorectal cancer〔J〕.Br J Cancer，2012;106(11):1826-32.

9 李 楠，李夏雨，黄 铄，等.miR-126靶向调控IRSI，SLC7A5及TOMI基因抑制结肠癌的增殖及侵袭转移〔J〕.中南大学学报(医学版)，2013;38(8):809-17.

10 林孟波，王金泗，薛芳沁，等.miR-126在人结肠癌细胞中的表达及其对结肠癌细胞生物学行为的影响〔J〕.疑难病杂志，2014;13(4):395-8.

11 杨爱萍，姜 藻，陈 静.Musashi-1、Ki-67的表达与食管鳞癌的临床意义［J］.中国现代医生，2009;47(32):58-60.