悬浮固化液相微萃取-高效液相色谱法分析生长素
2015-06-01卢巧梅张文敏黄川辉卢明华励建荣
卢巧梅, 张文敏, 黄川辉, 卢明华, 励建荣, 张 兰
(1. 福州大学测试中心, 福建 福州 350002; 2. 福州大学食品安全与检测重点实验室, 福建 福州 350116; 3. 浙江工商大学食品与生物工程学院, 浙江省食品安全重点实验室, 浙江 杭州 310035; 4. 渤海大学辽宁省食品安全重点实验室, 辽宁 锦州 121013)
悬浮固化液相微萃取-高效液相色谱法分析生长素
卢巧梅1, 2, 张文敏2, 黄川辉2, 卢明华2, 励建荣3, 4, 张 兰1, 2
(1. 福州大学测试中心, 福建 福州 350002; 2. 福州大学食品安全与检测重点实验室, 福建 福州 350116; 3. 浙江工商大学食品与生物工程学院, 浙江省食品安全重点实验室, 浙江 杭州 310035; 4. 渤海大学辽宁省食品安全重点实验室, 辽宁 锦州 121013)
建立基于悬浮固化液相微萃取预处理的高效液相色谱-荧光检测法(SFODME-HPLC-FLD)用于两种植物生长素(吲哚丙酸和吲哚丁酸)的分析. 实验考察各因素对萃取过程的影响, 确定最佳条件: 50 μL十二醇(纯)为萃取剂, 20.0 mL样品溶液(pH 3.0)、 0.25 g·mL-1NaCl、 26 ℃、 1 800 r·min-1条件下萃取10 min. 结果表明, SFODME技术重现性好、 灵敏度高, 相对标准偏差小于8.66%, 检测限为0.01 ng·mL-1, 线性范围为0.02~60 ng·mL-1, 加标回收率大于84.3%. 方法快速、 稳定、 环境友好, 适用于实际样品的检测.
悬浮固化液相微萃取; 高效液相色谱; 液相微萃取; 生长素
0 引言
样品前处理一直是分析检测的难点. 自1996年Jeannot和Cantwell提出液相微萃取(LPME)方法[1]后, 为了拓展LPME实用性, 学术界提出了多种模式, 包括单滴液相微萃取(SDME)[2]、 中空纤维-液相微萃取(HF-LPME)[3]、 分散液液微萃取(DLLME)[4]、 悬浮固化液相微萃取(SFODME)[5]等. 上述方法中, SDME将有机液滴悬挂在微量进样器针头上, 液滴表面积小、 易脱落而影响萃取效果和稳定性;……