APP下载

生物肥料“宁盾”对甜瓜枯萎病的防治效果

2014-07-16邢卫峰等

江苏农业科学 2014年3期
关键词:枯萎病生物防治甜瓜

邢卫峰等

摘要:通过田间试验发现,生物肥料“宁盾”能够有效防治甜瓜枯萎病,提高甜瓜的出苗率,促进甜瓜的生长,并显著提高甜瓜的产量和果实品质。在甜瓜连作田中,“宁盾”处理组枯萎病严重度显著低于对照组,生防效果高达8155%。育苗10 d后,“宁盾”处理组出苗率较对照组高20.66%~61.54%。在甜瓜“新景甜1号”移栽25 d后,“宁盾”处理组甜瓜的株高、茎粗、最大叶面积分别增加57.50%、8.18%、47.16%,处理组增产达21.02%;甜瓜“圣姑”移栽到大田45 d后,与对照组比较,“宁盾”处理组甜瓜株高、茎粗分别增加14.88%、15.15%,增产率高达57.61%。另外,“宁盾”处理组果实的硬度、可溶性固形物、可溶性糖含量均显著高于对照组,因此“宁盾”对甜瓜的品质具有明显的改善作用。

关键词:生物防治;枯萎病;甜瓜;促生长作用;生物肥料

中图分类号: S436.5 文献标志码: A 文章编号:1002-1302(2014)03-0078-03

甜瓜(Cueumis melon)别名香瓜,市场需求量大,随着栽培技术的不断发展,为了满足反季节甜瓜的市场需求,保护地栽培甜瓜应运而生,但多年连续栽培极易产生连作障碍。连作障碍是甜瓜生产中常见的难题之一,连作障碍产生的原因主要是土传病菌积累、植物自毒作用、土壤盐渍化和酸化等[1]。连作障碍会导致作物产量和品质的下降,然而由于连作障碍产生的因素非常复杂,生产上尚缺乏一套行之有效的解决方案或途径。甜瓜连作田中通常伴随枯萎病的发生。温玲连续统计了5年甜瓜连作田枯萎病的发病情况,5年后甜瓜枯萎病发病率达90%,造成了重大的经济损失[2]。生产上常用的克服连作障碍的技术有轮作和间套作[3]、选用抗病品种或嫁接[4-5]、无土栽培、合理的土壤管理和生物防治[6-8]等。其中较为有效可行的方法是选育抗病品种或嫁接和生物防治,但选育抗病品种费时费力,和嫁接一样都会导致甜瓜口感和品质下降[9],实际应用受到一定限制;因此生物防治成为目前国内外学者的研究热点,并将逐步成为农作物病虫害防治的重要手段之一。

生物肥料“宁盾”由南京农业大学生物源农药研发实验室研制,主要成分是2种芽孢杆菌和沙雷氏菌。通过前期研究发现,其对番茄青枯病、辣椒疫病、番茄根结线虫病等土传病害均有较好的防治效果[10-11]。“宁盾”通过有效地提高土壤中生物多样性,提高植物根围土壤速效氮磷钾的含量,对土壤肥力和结构具有良好的改善作用。本研究通过田间试验,初次评价了生物肥料“宁盾”防治甜瓜枯萎病的效果、对甜瓜的促生作用和对果实品质的提高效应,为甜瓜生产实践过程中克服连作障碍、提高综合效益提供参考。

1 材料与方法

1.1 供试菌剂、甜瓜品种和试验田概况

生物肥料“宁盾”是由南京农业大学生物源农药研发实验室研制、南京农大生物源农药创制有限公司开发的微生物肥产品[登记证号为微生物肥(2013)准字(1096)号],水剂,其中有效活菌含量>108 CFU/mL。

供试甜瓜品种为圣姑,购自农友种苗(中国)有限公司;新景甜1号,由黑龙江省景丰良种开发有限公司育成。

甜瓜圣姑试验安排在江苏省东海县白塔埠镇前营村甜瓜连作田进行,面积0.28 hm2;试验田连续5年种植甜瓜,甜瓜枯萎病发生严重。甜瓜新景甜1号试验安排在江苏省东海县白塔埠镇前营村甜瓜非连作田进行,面积0.28 hm2。

1.2 试验设计

本试验共设2个处理:处理组为生物肥料“宁盾” 120 L/hm2;对照组为清水对照。每处理设3小区重复,每个小区面积为223.5 m2,各处理随机区组排列。小区之间以保护行隔离,试验田按常规管理。甜瓜移栽到田间大棚时,用浓度 1×107 CFU/mL 的“宁盾”浇灌根部,“宁盾”使用量为 120 L/hm2。

1.3 调查内容与方法

1.3.1 出苗率统计 随机选择颗粒饱满程度一致、健康的甜瓜种子,分组装入小烧杯中,编号,种子表面用3%次氯酸钠溶液消毒10 min,用无菌水冲洗3次,分别以“宁盾”菌液或清水浸种5 min;之后分别置于无菌纱布上,28 ℃催芽24 h,其间适量补水,将催芽的种子放于苗床中,10 d后统计每个品种各处理组种子的出苗情况,计算出苗率:出苗率=出苗的种子数/供检测的种子数×100%。

1.3.2 促生作用调查 在调查甜瓜生长指标时,每小区取24株甜瓜植株测量株高、茎粗、叶片数和最大叶面积。

1.3.3 品质检测方法 硬度和可溶性固形物的检测方法参见Miccolis等的方法[12];可溶性糖的测定采用李合生等的蒽酮比色法[13];可溶性蛋白测定采用考马斯亮蓝比色法[13];维生素C测定采用2,6-二氯靛酚滴定法[13]。

1.3.4 生物防效统计 用5点取样法,调查统计病株数,并计算病情指数和防治效果。病害的严重度分级标准[14]如下:0级,全株无病,外部无症状;1级,全株叶片总数的25%以下叶片发病,或茎内维管束25%以下变褐色;2级,全株叶片总数的26%~50%叶片发病,或茎内维管束26%~50%变褐色;3级,全株叶片总数的51%~75%叶片发病,或茎内维管束51%~75%变褐,部分叶片萎蔫;4级,全株叶片总数的76%~100%叶片发病,或茎内维管束75%~100%变褐,或整株因病萎蔫枯死。病害严重度和生防效果的计算公式如下:

病害严重度=[∑(发病植株数×病级数)/(总植株数×最高病级数)]×100%;

生防效果=[(对照病害严重度-处理病害严重度)/对照病害严重度]×100%。

1.3.5 数据统计分析 生长指标以及品质的相关数据分析通过软件DPS 7.05完成。

2 结果与分析

2.1 生物肥料“宁盾”对甜瓜出苗的影响

10 d后统计每个品种各处理组种子的出苗情况,结果显示,宁盾处理组甜瓜圣姑、新景甜1号出苗率较对照组出苗率分别提高61.54%、20.66%(表1),表明生物肥料“宁盾”有利于甜瓜种子的萌发和幼苗的生长(图1)。

3 结论与讨论

生物菌剂“宁盾”是新研发的一种复合菌剂,具有防治多种土传病害、促进植物生长、改善果实品质的效果,在实际生产应用中有很大的防病促生长潜力。本试验田连作障碍的主要产生原因是甜瓜枯萎病的发生,试验结果显示,生物源农药“宁盾”能够有效防治枯萎病,防效高达81.55%。生物源农药“宁盾”的主效成分是芽孢杆菌,关于芽孢杆菌的防病机理已经有了较深入的探讨。曾有研究发现,Bacillus sp. AR156可以同时激发水杨酸介导的信号通路和JA/ET介导的信号通路,诱导植物产生ISR从而抵抗病原物的侵害[15];除此之外,陈云等对Bacillus subtilis 防病机理做了进一步研究,发现Bacillus subtilis可以通过在番茄根围形成稳定的生物膜,增强对番茄青枯病的防治效果,同时发现Bacillus subtilis对多种病原物有较强的拮抗作用[16]。

“宁盾”不仅有良好的防治枯萎病的能力,试验结果还显示,“宁盾”处理组甜瓜的出苗率较对照组提高了21.66%~61.65%,且显著促进了甜瓜的生长,株高、茎粗和叶面积均有不同程度的增加。其他报道显示,PGPR能够改变根构型,抑制主根的生长,促进侧根的生长,根围促生菌能够显著增加根重,增强植物从土壤中吸收养分的能力[17];伯霍尔德杆菌属PsJN接种拟南芥野生型Col-0显著增加了拟南芥叶面积,但没有显著增加叶片数[18]。前期研究发现,“宁盾”的单菌成分能够产生IAA、嗜铁素、产生VOCs,且具有解磷的作用,能够体外降解有机磷和无机磷。而据有关报道,许多根围促生菌能够产生IAA,可以直接或间接促进植物幼苗的生长和提高其产量[19]。次生代谢产物嗜铁素竞争其他菌类的铁离子,抑制有害微生物的生长。大多数根围促生菌具有解磷固氮作用,分解土壤中难以利用的有机磷或无机磷成为可利用的磷,以利于植物营养吸收。最近Meldau等报道芽孢杆菌B55产生的挥发性物质DMDS(二甲基二硫)直接参与硫代谢促进烟草的生长[20]。而这些特性确保给作物提供充足的营养,从而提高作物的产量和品质。

Yamaguehi等认为,甜瓜果实中糖含量的高低是衡量其品质的主要依据[21]。试验结果显示,“宁盾”处理组甜瓜的含糖量显著高于对照组,提高了10.78%;同样,其他品质指标,如可溶性蛋白、维生素C、可溶性固形物都有一定程度的增加;因此“宁盾”对甜瓜的品质有很好的改善,克服了嫁接、选育抗病品种等方法引起的品质下降,成为克服连作障碍更为有效和可行的方法。

参考文献:

[1]郑军辉,叶素芬,喻景权. 蔬菜作物连作障碍产生原因及生物防治[J]. 中国蔬菜,2004(3):56-58.

[2]温 玲. 甜瓜设施栽培土壤连作障碍及防治措施[J]. 北方园艺,2007(7):122

[3]孙祥良,谢关林,金扬秀. 轮作与甜瓜类枯萎病发病的关系[J]. 浙江大学学报:农业与生命科学版,2003,29(1):65-66.

[4]Paola C. Evaluation of rootstock resistance to fusarium wilt and gummy stem blight and effect on yield and quality of a grafted‘inodorusmelon[J]. HortScience,2007,42(3):521-525.

[5]Cohen R,Horev C,Burger Y,et al. Horticultural and pathological aspects of fusarium wilt management using grafted melons[J]. HortScience,2002,37(7):1069-1073.

[6]Larkin R P,Hopkins D L,Martin F N. Suppression of fusarium wilt of watermelon by non-pathogenic fusarium oxysporum and other microorganisms recovered from a disease-suppressive soil[J]. Phytopathology,1996,86(8):812-819.

[7]Zhao Q Y,Shen Q R,Ran W,et al. Inoculation of soil by Bacillus subtilis Y-IVI improves plant growth and colonization of the rhizosphere and interior tissues of muskmelon (Cucumis melo L.)[J]. Biology and Fertility of Soils,2011,47(5):507-514.

[8]Zhao Q Y,Dong C X,Yang X M,et al. Biocontrol of Fusarium wilt disease for Cucumis melon using bio-organic fertilizer[J]. Applied Soil Ecology,2011,47:67-75.

[9]李利兰,罗庆熙. 嫁接对甜瓜品质影响的研究进展[J]. 长江蔬菜,2011(12):4-7.

[10]Wei L H,Xue Q Y,Wei B Q,et al. Screening of antagonistic bacterial strains against Meloidogyne incognita using protease activity[J]. Biocontrol Science and Technology,2010,20(7):739-750.

[11]Jiang Z Q,Guo Y H,Li S M,et al. Evaluation of biocontrol efficiencies of different Bacillus preparations and different field application methods against Phytophthora bight of bell pepper[J]. Biological Control,2006,36(2):216-223.

[12]Miccolis V,Saltveit M E. Influence of storage period and temperature on the postharvest characteristics of six melon(Cucumis melo L.,Inodorus Group)cultivars[J]. Postharvest Biology and Technology,1995(5):211-219.

[13]李合生,孙 群,赵世杰,等. 植物生理生化实验原理和技术[M]. 北京:高等教育出版社,2000.

[14]李瑞琴. 甜瓜枯萎病病原学及防治技术研究[D]. 杨凌:西北农林科技大学,2004:13-16.

[15]Niu D D,Liu H X,Jiang C H,et al. The plant growth-promoting rhizobacterium Bacillus cereus AR156 induces systemic resistance in Arabidopsis thaliana by simultaneously activating salicylate-and jasmonate/ethylene-dependent signaling pathways[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,2011,24(5):533-542.

[16]Chen Y,Yan F,Chai Y R,et al. Biocontrol of tomato wilt disease by Bacillus subtilis isolates from natural environments depends on conserved genes mediating biofilm formation[J]. Environmental Microbiology,2013,15(3):848-864.

[17]López-Bucio J,Campos-Cuevas J C,Hernández-Calderón E,et al. Bacillus megaterium rhizobacteria promote growth and alter root-system architecture through an auxin-and ethylene-independent signaling mechanism in Arabidopsis thaliana[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,2007,20(2):207-217.

[18]Poupin M J,Timmermann T,Vega A,et al. Effects of the plant growth-promoting bacterium Burkholderia phytofirmans PsJN throughout the life cycle of Arabidopsis thaliana[J]. PLoS One,2013,8(7):e69435.

[19]Tsavkelova E A,Cherdyntseva T A,Klimova S Y,et al. Orchid-associated bacteria produce indole-3-acetic acid,promote seed germination,and increase their microbial yield in response to exogenous auxin[J]. Archives of Microbiology,2007,188(6):655-664.

[20]Meldau D G,Meldau S,Hoang L H,et al. Dimethyl disulfide produced by the naturally associated Bacterium bacillus sp.B55 promotes growth by enhancing sulfur nutrition nicotiana attenuate[J]. The Plant Cell,2013,25(7):2731-2747.

[21]Yamaguchi M,Hughes D M. Quality of cantaloupe muskmelons:variability and attributes[J]. Scientia Horticuhurae,1977,6(1):59-70.

[10]Wei L H,Xue Q Y,Wei B Q,et al. Screening of antagonistic bacterial strains against Meloidogyne incognita using protease activity[J]. Biocontrol Science and Technology,2010,20(7):739-750.

[11]Jiang Z Q,Guo Y H,Li S M,et al. Evaluation of biocontrol efficiencies of different Bacillus preparations and different field application methods against Phytophthora bight of bell pepper[J]. Biological Control,2006,36(2):216-223.

[12]Miccolis V,Saltveit M E. Influence of storage period and temperature on the postharvest characteristics of six melon(Cucumis melo L.,Inodorus Group)cultivars[J]. Postharvest Biology and Technology,1995(5):211-219.

[13]李合生,孙 群,赵世杰,等. 植物生理生化实验原理和技术[M]. 北京:高等教育出版社,2000.

[14]李瑞琴. 甜瓜枯萎病病原学及防治技术研究[D]. 杨凌:西北农林科技大学,2004:13-16.

[15]Niu D D,Liu H X,Jiang C H,et al. The plant growth-promoting rhizobacterium Bacillus cereus AR156 induces systemic resistance in Arabidopsis thaliana by simultaneously activating salicylate-and jasmonate/ethylene-dependent signaling pathways[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,2011,24(5):533-542.

[16]Chen Y,Yan F,Chai Y R,et al. Biocontrol of tomato wilt disease by Bacillus subtilis isolates from natural environments depends on conserved genes mediating biofilm formation[J]. Environmental Microbiology,2013,15(3):848-864.

[17]López-Bucio J,Campos-Cuevas J C,Hernández-Calderón E,et al. Bacillus megaterium rhizobacteria promote growth and alter root-system architecture through an auxin-and ethylene-independent signaling mechanism in Arabidopsis thaliana[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,2007,20(2):207-217.

[18]Poupin M J,Timmermann T,Vega A,et al. Effects of the plant growth-promoting bacterium Burkholderia phytofirmans PsJN throughout the life cycle of Arabidopsis thaliana[J]. PLoS One,2013,8(7):e69435.

[19]Tsavkelova E A,Cherdyntseva T A,Klimova S Y,et al. Orchid-associated bacteria produce indole-3-acetic acid,promote seed germination,and increase their microbial yield in response to exogenous auxin[J]. Archives of Microbiology,2007,188(6):655-664.

[20]Meldau D G,Meldau S,Hoang L H,et al. Dimethyl disulfide produced by the naturally associated Bacterium bacillus sp.B55 promotes growth by enhancing sulfur nutrition nicotiana attenuate[J]. The Plant Cell,2013,25(7):2731-2747.

[21]Yamaguchi M,Hughes D M. Quality of cantaloupe muskmelons:variability and attributes[J]. Scientia Horticuhurae,1977,6(1):59-70.

[10]Wei L H,Xue Q Y,Wei B Q,et al. Screening of antagonistic bacterial strains against Meloidogyne incognita using protease activity[J]. Biocontrol Science and Technology,2010,20(7):739-750.

[11]Jiang Z Q,Guo Y H,Li S M,et al. Evaluation of biocontrol efficiencies of different Bacillus preparations and different field application methods against Phytophthora bight of bell pepper[J]. Biological Control,2006,36(2):216-223.

[12]Miccolis V,Saltveit M E. Influence of storage period and temperature on the postharvest characteristics of six melon(Cucumis melo L.,Inodorus Group)cultivars[J]. Postharvest Biology and Technology,1995(5):211-219.

[13]李合生,孙 群,赵世杰,等. 植物生理生化实验原理和技术[M]. 北京:高等教育出版社,2000.

[14]李瑞琴. 甜瓜枯萎病病原学及防治技术研究[D]. 杨凌:西北农林科技大学,2004:13-16.

[15]Niu D D,Liu H X,Jiang C H,et al. The plant growth-promoting rhizobacterium Bacillus cereus AR156 induces systemic resistance in Arabidopsis thaliana by simultaneously activating salicylate-and jasmonate/ethylene-dependent signaling pathways[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,2011,24(5):533-542.

[16]Chen Y,Yan F,Chai Y R,et al. Biocontrol of tomato wilt disease by Bacillus subtilis isolates from natural environments depends on conserved genes mediating biofilm formation[J]. Environmental Microbiology,2013,15(3):848-864.

[17]López-Bucio J,Campos-Cuevas J C,Hernández-Calderón E,et al. Bacillus megaterium rhizobacteria promote growth and alter root-system architecture through an auxin-and ethylene-independent signaling mechanism in Arabidopsis thaliana[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,2007,20(2):207-217.

[18]Poupin M J,Timmermann T,Vega A,et al. Effects of the plant growth-promoting bacterium Burkholderia phytofirmans PsJN throughout the life cycle of Arabidopsis thaliana[J]. PLoS One,2013,8(7):e69435.

[19]Tsavkelova E A,Cherdyntseva T A,Klimova S Y,et al. Orchid-associated bacteria produce indole-3-acetic acid,promote seed germination,and increase their microbial yield in response to exogenous auxin[J]. Archives of Microbiology,2007,188(6):655-664.

[20]Meldau D G,Meldau S,Hoang L H,et al. Dimethyl disulfide produced by the naturally associated Bacterium bacillus sp.B55 promotes growth by enhancing sulfur nutrition nicotiana attenuate[J]. The Plant Cell,2013,25(7):2731-2747.

[21]Yamaguchi M,Hughes D M. Quality of cantaloupe muskmelons:variability and attributes[J]. Scientia Horticuhurae,1977,6(1):59-70.

猜你喜欢

枯萎病生物防治甜瓜
植物内生菌在植物病害中的生物防治
浅谈林业有害生物防治
薄皮甜瓜新品种垦甜1号的选育
植物病害生物防治
非洲:控制香蕉枯萎病的新方法
我喜欢吃甜瓜
中甜1号甜瓜
棉花黄萎病拮抗菌的筛选及其生物防治效果
铜、锌元素对香蕉枯萎病的防治有显著效果
一株抗药用白菊枯萎病生防菌的分离与生防效应研究