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月季花的快速繁育研究

2014-01-28陈建雄陈艳瑞张艳敏

园艺与种苗 2014年5期
关键词:丛生腋芽月季花

陈建雄,陈艳瑞,张艳敏

(1.乌鲁木齐市种苗场,新疆乌鲁木齐830013;2.中国科学院新疆理化技术研究所,新疆乌鲁木齐830011 3.新疆乌鲁木齐林业局林业处,新疆乌鲁木齐402760)

月季花(Rosa chinansis)又名长春花、月月红、斗雪红等,被评为我国的十大名花之一[1-4],是近代世界各国广泛应用于园林绿化、庭园栽培和商业生产中的花卉,花大色艳,姿态妩媚婀娜,而且花期长,具有很高的观赏价值,是城市园林绿化的重要花卉之一。月季在我国栽培已有悠久历史,现在新疆也有广泛栽培,但由于新疆气候干燥,传统的月季花的繁殖受到气候因子的制约,同时,由于栽培方法的落后,许多月季花的优良性状在几年当中急剧退化,这使推广和发展月季在城市绿化中的应用受到了限制[5]。

为了快速繁育月季的优良品种,保持品系的优良性状,笔者在月季花组织培养相关文献资料[6-8]的基础上,试图通过离体培养的方法进行月季花组培方面的探索,建立能大量、迅速生产月季花的组培方法,最终实现月季花工厂化育苗的目的,介绍如下。

1 材料与方法

在健康的优良月季母株上,取腋芽的幼茎,剥去腋芽的嫩叶,用自来水进行冲洗,然后在无菌超净工作台上进行消毒,即把幼茎浸入70%酒精中1~2 s,并用无菌水冲洗,再放入0.1%氯化汞(HgCl2)中消毒5 min左右。接着,用无菌水反复冲洗4~5次,再将幼茎切成小段,在酒精灯下操作,接种在已消毒的固体培养基上,诱导腋芽萌发。

月季嫩茎培养选用MS培养基+蔗糖3%+琼脂0.8%,pH调整到5.5~6.0,在MS培养基中分别加入不同浓度的 6-苄基嘌呤(6-BA)、奈乙酸(NAA)、赤霉素(GA)、吲哚乙酸(IAA)、吲哚丁酸(IBA)等,配好的培养基经过高温、高压消毒,把盛有培养基的三角瓶放在高压蒸汽灭菌锅内(YXQ601型)保持1.1个大气压30 min,进行灭菌消毒,取出放入准备室待用。

培养条件:温度为18~24℃,每日光照10 h左右,光强为1 500~2 500 lx,将萌发的嫩芽进行继代培养,得到大量的丛生芽,将丛生芽分割成单株,再接种到生根培养基上诱导生根后,移栽至(按1∶3的比例混合)锯末与培养土基质上,移栽幼苗逐步进行练苗14 d后,即可进入苗期的普通栽培管理。

2 结果与分析

2.1 芽的诱导、增殖与生长

将带有腋芽的嫩芽节段,接种于MS+6-BA(1.5~2.0 mg/L)+NAA 0.5~1.0 mg/L+GA 1.0~2.0 mg/L 培养基上,培养2~4 d后都可以使腋芽萌动,10 d后腋芽生成,而且生长速度很快,在愈伤组织周围产生大量的丛生芽。从试验结果观察发现,培养基中的芽生长较快,但不易形成愈伤组织,而且一般看来,具有较大的腋芽,萌动快,芽生长迅速,但不易形成丛生芽,而腋芽较小的,萌动较慢,芽生长缓慢,但易形成丛生芽。另外还发现,较细的嫩茎,一般成苗快,生长良好,而较粗状的老茎,一般成苗慢,芽生长不够理想。由此可见,在试验中外植体的选择很重要。

将上述培养基上生长的嫩芽转入相同培养基中进行继代培养10~15 d后,所有的腋芽开始大量长芽,形成丛生芽,然后将丛生芽切割再分别转入相同的培养基中进行继代培养。

2.2 愈伤组织的形成及扩繁

将带有腋芽的嫩茎接种在MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 1.0~2.0 mg/L+GA 1.0~1.5 mg/L培养基中,2个月后,腋芽生长健壮,并形成大量的丛生芽,但苗生长缓慢,且在芽基部形成大量的愈伤组织,将其愈伤组织切割再接种于该培养基中,可进行扩繁增殖,另外,根据观察发现,有一愈伤组织在MS+6-BA 1.5~3.0 mg/L+NAA 4.0~5.0 mg/L+GA 1.5~3.0 mg/L培养基上诱导出苗,其他培养基中的愈伤组织还没有此情况。

2.3 不同培养基对芽生长的影响

将带有月季花腋芽的嫩茎接种在6-BA、NAA、GA等不同浓度的激素培养基中,发现激素浓度对月季花腋芽的生长有很大影响。开始试验时,笔者选择的是前人选用的配方,其浓度为MS+6-BA1mg/L+NAA 0.1 mg/L接种50个腋芽,7 d后腋芽变黑,1个月后陆续死亡。之后又选择了苏州、石家庄等地提供的培养基,但结果均不理想。在此基础上,笔者调整激素浓度与配比,经反复试验,终于取得了较为理想的试验结果,得到适合月季花芽生长的培养基为MS+6-BA 1.5~2.0 mg/L+NAA 0.5~1.0 mg/L+GA 1.0~2.0 mg/L。

2.4 不同培养基对生根的影响

将在增殖培养基上生长的无根月季小苗接于1/2 MS+NAA 0.5~1.0 mg/L,或 MS+6-BA l.5~2.0 mg/L+IAA 1.0~1.5 mg/L的生根培养基上15 d后,绝大多数的月季小苗均可长出根,且地上部分的苗和地下部分的根长势较好。

从试验观察结果来看,将要生根的月季小苗放在黑暗处7 d后,再放入光照处,其生根较快,黑暗能加速诱导生根,在试管苗基部形成了愈伤组织后,一般均生根且生根快。将已形成根原基的试管苗取出,用自来水冲洗干净培养基,直接栽在锯末与土以1∶3体积混合的营养钵中,浇透水,用玻璃罩罩住;初期,注意遮阴保湿,常浇稀释营养水,保持温度在18~20℃,一般均可成活。

2.5 试管苗中花蕾形成

在MS+6-BA 1.5~2.0 mg/L+NAA 0.5~2.0 mg/L分化培养基中,均发现有花蕾形成。试验表明,生长素(IAA或NAA、IBA)与细胞分裂素6-BA以一定的组合对月季芽器官分化产生十分显著的影响,尤其应注意不同品种月季在相同条件因子运用同样激素水平的处理,其芽的增殖和生长情况很不一致,这可能是品种间的遗传基因差异及内源激素水平不同所致。

表1 不同激素配比对芽生长的影响

表2 不同培养基条件下根的生长情况

3 结论与讨论

月季的多芽苗无性系快速繁殖是可以通过诱导愈伤组织出苗,然后进行丛生苗的扩繁和诱导出根的途径来进行大量繁殖,这是一条较快的扩繁途径。这样既降低了成本,又可获取较高的经济效益。月季脱毒苗快速繁殖周期短,40 d左右一代,并在当年应用于生产。综上可知,通过组织培养的方法进行月季花种苗的快速繁殖、保持其优良性状的延续,是成功有效的快繁途径。实现该花卉的工厂化育苗,可为大面积绿化,提高绿化的水平,美化生活,提供优良花卉品种。

[1]薛永卿.月季在城市园林绿化中的应用前景[J].河南林业科技,2005,25(4):43-44.

[2]刘林幸.月季在园林绿化美化中的应用[J].园艺与种苗,2013(6):30-32.

[3] 李绍佳.月季遗传背景研究进展[J].园艺与种苗,2012(12):60-62.

[4]迟东明,岳玲,宋伟,等.树状月季的栽培管理及应用探讨[J].园艺与种苗,2013(5):25-27.

[5]盖博格 D·L.植物组织培养方法[M].北京:科学出版社,1930.

[6]俞燕芳,管帮富,彭火辉,等.3种不同花色大花月季的组织培养研究[J].江西农业学报,2013,25(10):33-35.

[7]闫海霞,武鹏,万正林,等.月季衰老机理及保鲜影响因素的研究进展[J].南方农业学报,2013,44(8):1355-1361.

[8] 刘文萍.月季脱毒苗的快繁技术[J].中国农学通报,1997,13(3):59-60.

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