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刺梨叶提取工艺优化及其抗氧化活性研究

2022-05-31丁小艳

食品安全导刊 2022年13期
关键词:刺梨极性容量瓶

刘 丹,丁小艳

(1.贵州省食品药品检验所,贵州贵阳 550004;2.贵州省材料产业技术研究院,贵州贵阳 550016)

实验中所用刺梨叶,被2003版《贵州省中药材、民族药材质量标准》收录,是药食同源植物,在贵州省等地分布较为广泛,目前在贵州多地有种植基地,为贵州的优势经济作物[1-3]。近年来,刺梨产业的发展得到了贵州省委、省政府的高度重视,大力支持相关的科学研究。

刺梨叶中的成分对自由基有清除作用。刺梨中的多酚类、黄酮类成分,已被研究证明具有很好的抗氧化作用[4-6]。在近年来的研究中发现刺梨叶有α-葡萄糖苷酶抑制活性,对2型糖尿病大鼠脂代谢也起一定的治疗作用[7-11],这都与刺梨叶的抗氧化机制相关,说明刺梨叶中的抗氧化活性物质值得被深入研究,可制成茶叶等饮品,具有广阔的食品、保健食品应用前景。本实验优化刺梨叶活性成分提取工艺,再比较刺梨叶不同极性部位提取物的抗氧化活性。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

刺梨叶样品为蔷薇科蔷薇属植物缫丝花的干燥叶;Folin-Ciocalteu试剂(F-C试剂,自制);没食子酸对照品(中国食品药品检定研究院,批号110831-201204);芦丁对照品(成都曼斯特生物有限公司,批号MUST-11040302);水为去离子水;试剂均为分析纯。

CARY100-Bio紫外-可见分光光度计(美国瓦里安中国有限公司);DY-H4-型电热恒温水浴锅(上海精宏实验设备有限公司);KQ-500DB超声波清洗仪(昆山市超声仪器有限公司);ACCULAB型万分之一电子天平(深圳市郎普电子科技有限公司);高速中药粉碎机(上海精宏试验设备有限公司);高效液相色谱仪(美国沃特世中国有限公司);ALC-210.4电子天平(赛多利斯科学仪器北京有限公司);GZX-GFC-101-2-BS型电热恒温鼓风干燥箱(上海博泰实验设备有限公司);80-2台式低速离心机(上海医疗器械集团有限公司)。

1.2 实验方法

1.2.1 溶液制备

(1)提取工艺优化供试品溶液制备。刺梨叶干燥后粉碎,过筛,得刺梨叶供试品。称取适量刺梨叶供试品,加入10倍量的石油醚浸泡达24 h脱色后,过滤,用石油醚洗涤,干燥后称取1 g样品于50 mL锥形瓶中,精密称定,设置60%乙醇超声提取,3 000 r/min离心10 min,取上清液稀释后待测。

(2)对照品溶液制备。①芦丁标准溶液的配制。准确称取芦丁对照品116.84 mg置于50 mL容量瓶中,用60%乙醇稀释并定容至刻度,制得2.29 mg/mL对照品储备液。精密吸取2.5 mL对照品储备液于25 mL容量瓶中,60%乙醇稀释至刻度,制得229.0 μg/mL芦丁标准液[12]。②没食子酸标准溶液配制。精密称取没食子酸对照品50.0 mg于50 mL容量瓶中,去离子水溶解定容至50 mL,得质量浓度为0.899 mg/mL没食子酸储备液。精密吸取该储备液5 mL于50 mL容量瓶中并用去离子水定容至刻度,制得89.9 μg/mL的没食子酸标准溶液[13]。

(3)抗氧化活性比较供试液制备。精密称取1.2.1项下脱色并干燥后的刺梨粉20 g,60%乙醇溶液,料液比1∶10(g∶mL),超声提取60 min,提取2次,过滤。精密吸取滤液50 mL,为醇层,其他滤液减压蒸发回收乙醇,剩余水溶液分别采用极性增大的乙酸乙酯和水饱和正丁醇依次萃取,最后为水相部位。

1.2.2 正交实验

根据前期的单因素实验,各条件最佳点为液料比25∶1,超声时间30 min,乙醇浓度60%。以各最佳点为中心设计正交实验。以目标函数确定达到总黄酮和总多酚的最佳提取条件,选择加权综合评分法,以总黄酮和总多酚各占50%来确定最佳提取工艺[14],因素水平见表1。

表1 因素水平表

1.2.3 总抗氧化力和DPPH自由基清除率测定

(1)总抗氧化力测定。精密称取不同极性部位提取物于25 mL容量瓶中,制成浓度为2.6 mg/mL的样品液,将样品液稀释10倍,则制得待测液。分别加入待测液0.5 mL、1.0 mL、1.5 mL、2.5 mL、3.5 mL和4.5 mL于10 mL具塞试管中(空白不加样液,以同体积超纯水代替),加超纯水至体积为1.5 mL,加 入0.6 mol/L的H2SO4溶 液1 mL,28 mmol/L的Na3PO4溶液1.5 mL,4 mmol/L的钼酸铵溶液1.5 mL,再加超纯水至总体积为10 mL,摇匀后置于95 ℃恒温水浴中1.5 h,取出,冷至室温,在695 nm波长处测定吸光度。每个样品平行3次实验。

(2)DPPH自由基清除率测定。将上述总抗氧化力测定中制成的样品液稀释100倍则制得待测液,分别取0.7 mL、1.0 mL、1.3 mL、1.6 mL、1.9 mL和2.2 mL待测液,加超纯水至4 mL,再加0.25 mmol/L的DPPH乙醇溶液2 mL,置暗箱中反应30 min,于517 nm处测定吸光度。对照不加供试液。每个样品平行3次实验。

2 结果与分析

2.1 正交实验优化

由表2可知,极差分析结果显示,提取条件中对测定结果影响程度由大到小的顺序为乙醇浓度、料液比、超声时间;由k值得,最优组合为A1B3C2,得分为664.20分,低于正交实验表中的最佳组合A3B3C2(684.89分)。因此当料液比1∶30、超声时间60 min,乙醇浓度60%时,综合评分最高,提取工艺最佳。

表2 正交实验结果

2.2 刺梨叶不同极性部位抗氧化力比较

由表3可知,刺梨叶不同部位的抗氧化能力大小均为水饱和正丁醇层>乙酸乙酯层>醇层>水层。

表3 不同部位抗氧化能力测定

3 结论

刺梨叶的药理活性与其抗氧化机制有关,可开发相关的保健食品。实验前期研究中发现刺梨叶有很高的抗氧化活性,对刺梨叶的各个极性部位提取物的抗氧化活性进行对比,发现刺梨叶中起抗氧化作用的物质主要在正丁醇层,其次乙酸乙酯层,研究结果表明有必要对抗氧化能力强的极性部位进行深入研究。

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