APP下载

分子印迹聚合物在黄酮类化合物分离中的应用进展

2015-01-18朱俊访

中成药 2015年8期
关键词:乙烯基交联剂芦丁

朱俊访, 李 博

(广东食品药品职业学院,广东广州510520)

分子印迹聚合物在黄酮类化合物分离中的应用进展

朱俊访, 李 博

(广东食品药品职业学院,广东广州510520)

以天然产物活性成分为模板制备的分子印迹聚合物 (MIPs)具有强特异性和高选择性,在天然产物研究中有良好的应用前景。本文综述了MIPs在黄酮类化合物分离分析中的应用。

分子印迹聚合物;黄酮;分离;综述

分子印迹技术具有分子识别性强、固定相制备简便快捷、操作简单、性质稳定、溶剂消耗量小以及模版分子和分子印迹聚合物 (MIPs)可回收利用等优点[1]。以中药活性物质为模板制备的MIPs有着其他材料所不具备的强特异性和高选择性,因此在中药活性成分的分离分析中具有良好的应用前景[2-4]。

黄酮类化合物在自然界分布广泛,大多存在于高等植物中,是一类非常重要的多酚类天然产物。它种类繁多,并具有多种生理活性,如治疗心脑血管疾病、保肝、抗氧化、抗菌、抗炎等,这使得国内外学者对其进行更加广泛和深入的研究[5]。近年来,有许多文献[6-7]报道利用分子印迹技术对黄酮类化合物进行分离。黄酮类化合物结构见图1。

1 槲皮素

Tian等[8]以槲皮素为模板,丙烯酰胺 (AM)为功能单体,乙二醇二甲基丙烯酸酯 (EGDMA)为交联剂,四氢呋喃为致孔剂制备MIPs,对日本扁柏中黄酮粗提物进行纯化。它对提取物中黄酮类成分具有良好的选择性与吸附能力,槲皮素、杨梅酮和穗花杉双黄酮的平均回收率分别可达78%、88%和72%。

图1 黄酮类化合物结构

Yu等[9]以槲皮素为模板,乙烯基吡咯烷酮和丙烯酸为功能单体,甲叉双丙烯酰胺 (NMBA)为交联剂,抗坏血酸和过氧化氢氧化还原系统为引发剂,乙醇-水为致孔剂,通过加热本体聚合制备MIPs。它对槲皮素和金雀异黄素混合物中的前者有特异性的识别能力,分离度为6.58。

单娟娟等[10]以槲皮素-铜 (Ⅱ)配合物为模板,甲基丙烯酸 (MAA)为功能单体,在强极性溶剂—甲醇中制备MIPs。它在铜离子的存在下对槲皮素表现出良好的结合性能,对槲皮素-铜 (Ⅱ)配合物的最大结合量达到61.09 μmo1/g。

Kryvshenko等[11]以乙酸镍为离子介质,MAA为功能单体,EGDMA为交联剂,四氢呋喃-甲醇(3∶1,v/v)为溶剂,径迹蚀刻膜 (0.45μm)为载体,通过光引发剂 (Darocur1173)引发聚合反应制备槲皮素分子印迹膜。它具有更好的渗透性与选择性,对槲皮素/芦丁和槲皮素/柚皮素的分离度分别为4.5和4.9。

Pakade等[12]以槲皮素为模板,4-乙烯基吡啶为功能单体,EGDMA为交联剂,在不同的溶剂中制备对槲皮素具有高识别能力的MIPs。在应用MIPs从洋葱中提取槲皮素时发现,无论是在25℃或84℃下,它的结合能力均比空白印迹聚合物 (NIP)高,而且高温时效果更显著,在25℃和84℃下的最大结合量分别为30μmo1/g和120μmo1/g。

Chen等[13]以槲皮素为模板,AM、丙烯酸 (AA)和甲基丙烯酸甲酯(MMA)为功能单体,NMBA为交联剂,维生素C和H2O2为激发剂,甲醇-乙醇混合溶液为溶剂制备MIPs。经实验考察,确定槲皮素、AA、MMA、NMBA、H2O2与丙烯酰胺的最佳摩尔比分别为0.067、73、38、26.8、0.054;H2O2与维生素C的最佳摩尔比为16;最佳温度为45℃;最佳时间为24 h。它对槲皮素和异鼠李素混合物的分离度可达4.00。

Castro López等[14]应用热聚合法制备槲皮素MIPs以富集及纯化儿茶素。以4-乙烯基吡啶为功能单体,EGDMA为交联剂,丙酮-乙腈混合溶液为致孔剂,分别用槲皮素、儿茶素、表儿茶素以及分子量相近的生育酚考察该MIPs的选择性。结果显示,它在固相萃取中对槲皮素及其结构类似物有良好的结合能力,其中对白茶中儿茶素的回收率可达90%。

Huangfu等[15]以槲皮素和 Co(Ⅱ)络合物为模板,AM为功能单体,EGDMA为交联剂制备MIPs,在甲醇-四氢呋喃混合溶液中分别通过光和热引发聚合反应,结果发现这两种方法制备的MIPs具有不同的分子结构。通过紫外吸收光谱法,确定槲皮素和 Co(Ⅱ)的最佳摩尔比为1∶2。等温吸附和选择性实验表明,该MIPs对于络合了钴离子的槲皮素具有高亲和力和特异性识别能力。

Bi等[16]以槲皮素为模板,1-乙烯基-3-丁基咪唑乳酸为功能单体,EDGMA为交联剂制备阴离子官能化MIPs,用于黄酮类化合物的多相分散萃取。当应用它从日本扁柏中分离槲皮素、杨梅素和穗花杉双黄酮时,平均回收率分别为88.07%、93.59%和95.13%。

Pakade等[17]以槲皮素为模板,4-乙烯基吡啶为功能单体,EGDMA为交联剂制备MIPs,从辣木的甲醇提取物中分离黄酮苷元 (槲皮素、山柰酚),并以其制备固相萃取柱。结果显示,它对杨梅素、槲皮素和山奈酚的吸附能力分别为2.0、3.4和2.7μmo1/g,而且在辣木叶子和花朵的甲醇提取物中,槲皮素和山奈酚的回收率分别为77%~85%和75%~86%。

Hong等[18]将槲皮素MIPs用于固相萃取,分离金钱草中的槲皮素。该方法与药典报道的提取率相近,但与药典法相比,它又具有速度快、操作简便、能同时进行提取和纯化等优点。

Verma等[19]以槲皮素为模板,AM为功能单体,EDGMA为交联剂,偶氮二异丁基腈 (AIBN)为引发剂,甲醇和乙酸乙酯为致孔剂制备MIPs。

2 芦丁

Peng等[20]使用本体聚合法,以芦丁为模板,AM为功能单体,EDGMA为交联剂,AIBN为引发剂,四氢呋喃为致孔剂制备芦丁MIPs,并考察它对芦丁、槲皮素和金雀异黄素的吸附能力。结果表明,当应用该MIPs从藜蒿、青蒿、杜仲、三白草中分离芦丁时,回收率分别为91.3%、89.0%、85.8、89.1%。

Fu等[21]以芦丁为模板,AA和 AM为功能单体,NMBA为交联剂,H2O2/Vc为引发剂制备芦丁MIPs。经实验考察,芦丁、AA、NMBA、H2O2与丙烯酰胺的最佳摩尔比分别为0.033、128、35、0.074;H2O2与Vc的最佳摩尔比为10.3;最佳聚合时间为30 h;最佳温度为45℃。此条件下所得的MIPs对芦丁具有高亲和力和立体选择性,分离度可达5.0。

Zeng等[22]使用磁性分子印迹技术分离中药中的芦丁,以经过正硅酸乙酯和硅烷偶联剂官能化的Fe3O4为磁性中心,芦丁为模板分子,AM为功能单体制备MIPs,用于分离三白草和槐花中的芦丁,平均回收率分别为84.33%和85.20%。另外,他们还用丙烯酰胺/2-乙烯基吡啶 (3∶1)双功能单体和乙二醇二甲基丙烯酸酯/二乙烯基苯 (3∶1)双交联剂制备MIPs[23],模板、功能单体、交联剂之间的最佳比例为1∶6∶20,同样用于分离以上两种植物中的芦丁,平均回收率分别为85.93%和88.61%。

杨云裳等[24]以芦丁为模板分子,AM为功能单体,EDGMA为交联剂,AIBN为引发剂,在甲醇-水混合溶液中制备芦丁MIPs。结果显示,它对芦丁吸附速度快,达到吸附平衡的时间为30min,最大饱和吸附量为73.50mg/g。

3 葛根素

Chen等[25]以葛根素为分子印迹模板,比较两种常见的功能单体AM和MAA。实验结果表明,AM作为功能单体效果较好。另外,他们还通过平衡结合实验和竞争吸附实验研究MIPs的结合能力和选择性,发现当利用它从葛根样品提取液中富集葛根素时,回收率可达86%,纯度可达96%。

赵家伟等[26]通过分子模拟辅助设计,以染料木素为模板,4-乙烯吡啶、AM和MAA为候选功能单体,二甲基甲酰胺和十二醇的混合溶剂为致孔剂,制备对葛根异黄酮具有特异性识别能力的分子印迹整体柱。密度泛函 (DFT)计算结果表明,4-乙烯吡啶与染料木素之间的相互作用最强,最佳比例为2∶1。

4 木犀草素

Zhang等[27]以木犀草素为模板,氨丙基三乙氧基硅烷为功能单体,正硅酸乙酯为交联剂,利用二甲基乙酰胺和聚砜制备MIPs。它对木犀草素有特异的吸附能力,并且其结合能力比芦丁强。

肖淑娟等[28]以木犀草素为分子模板,AM为功能单体、EGDMA为交联剂制备木犀草素MIPs,用于花生壳中木犀草素的固相萃取。结果所得该成分的纯度比硅胶柱分离法高20%,达到96.2%。

5 山柰酚

He等[29]以硅烷化二氧化硅为载体,2-乙烯基吡啶为功能单体,EGDMA为交联剂,通过表面聚合制备山柰酚MIPs。在山柰酚、杨梅黄素和绿原酸的选择性实验中发现,它对山柰酚表现出较强的识别能力和亲和力。

贺敏强等[30]采用分子印迹技术,以山柰酚为模板分子,2-乙烯吡啶为功能单体,EGDMA为交联剂制备山柰酚MIPs。与对照物杨梅黄素和绿原酸相比,它对山柰酚具有高选择性和分子识别能力。

6 柚皮苷

Ma等[31]以柚皮苷为模板,β-环糊精为功能单体,六亚甲基二异氰酸酯和环氧氯丙烷为交联剂,分别采用溶液聚合法和乳液聚合法制备四种MIPs,并考察它们在水溶液中识别和分离柚皮苷的能力。结果发现,这些MIPs都表现出对柚皮苷的高选择性,其中以六亚甲基二异氰酸酯为交联剂,使用乳液聚合得到的MIPs效果最好,印迹因子为1.53。

Ma等[32]以柚皮苷为模板,壳聚糖为功能分子,硫酸为交联剂,PEG20000为致孔剂,使用相反转技术制备MIPs,在水溶液中用于新橙皮苷和柚皮苷混合物中后者的分离。结果发现,在8小时内它的渗透比最高,为11.16%。

Yang等[33]以4-乙烯基苯硼酸为功能单体,EGDMA为交联剂,采用共价印迹制备柚皮苷MIPs。实验表明,它对柚皮苷的吸附在3小时内达到平衡,最大平衡吸附量为64.80μmo1/g。同时,将该MIPs用于固相萃取橘红提取物,并富集柚皮苷,发现其纯度为72%。

7 前景与展望

分子印迹技术具有专一的分子识别能力,与传统分离方法相比,该技术简单可靠,在中药有效成分分离中具有很好的应用前景。但它仍然存在着一些问题,如模板分子的获取与用量、聚合物的吸附容量、结构复杂的大分子化合物分离等,需要研究人员作进一步的研究。

[1]谭天伟.分子印迹技术及应用[M].北京:化学工业出版社,2010.

[2]陈方方,师彦平.分子印迹固相萃取技术在天然产物有效成分分离分析中的应用进展[J].色谱,2013,31(7):626-633.

[3]朱全红,冯建涌,罗佳波.分子印迹聚合物在中药研究中的应用[J].中草药,2008,39(2):294-297.

[4]Pardo A,Mespoui11e L,Dubois P,etal.Targeted extraction of active compounds from natura1 products by mo1ecu1ar1y imprinted po1ymers[J].Cent Eur JChem,2012,10(3):751-765.

[5]沈志滨.天然药物化学[M].北京:中国医药科技出版社,2012.

[6]于兰哲.槲皮素和山柰素分子印迹提纯技术研究[D].北京:北京林业大学,2011.

[7]Sta1ikas CD.Extraction,separation,and detectionmethods for pheno1ic acids and f1avonoids[J].J Sep Sci,2007,30(18):3268-3295.

[8]Tian M,Han D,Row K H.Preparation ofmo1ecu1ar1y imprinted po1ymer for extracting f1avones from Chamaecyparis Obtusa[J].Anal Lett,2011,44(5):737-746.

[9]Yu H,Chen Z B,Yu F,et a1.Synthesis and optimization of mo1ecu1ar1y imprinted po1ymers for quercetin[J].J Soc Chem Ind,2012,61(6):1002-1009.

[10]单娟娟,王 兵.槲皮素-铜 (Ⅱ)配位分子印迹聚合物的制备[J].高分子学报,2011(1):100-106.

[11]Kryvshenko G A,Ape1P Y,Abramchuk S S,et al.A high1y permeab1e membrane for separation of quercetin obtained by nicke1(II)ion-mediated mo1ecu1ar imprinting[J].Sep Sci Technol,2012,47(12):1715-1724.

[12]Pakade V,Lindah1S,Chimuka L,etal.Mo1ecu1ar1y imprinted po1ymers targeting quercetin in high-temperature aqueous so1utions[J].JChromatogr A,2012,1230:15-23.

[13]Chen Z B,Wang M,Fu Y,et al.Preparation of quercetin mo-1ecu1ar1y imprinted po1ymers[J].Des Monomers Polym,2012,15(1):93-111.

[14]Castro López M M,Pérez C,Dopico García M S,etal.Preparation,eva1uation and characterization of quercetin-mo1ecu1ar1y imprinted po1ymer for preconcentration and c1ean-up of catechins[J].Anal Chim Acta,2012,721:68-78.

[15]Huangfu F Y,Wang B,Li M F.Synthesis and eva1uation of a meta1-comp1exing imprinted po1ymer for Chinese herbs quercetin[J].JAppl Polym Sci,2012,126(2):501-509.

[16]BiW,Tian M,Row K H.Eva1uation ofmo1ecu1ar1y imprinted anion-functiona1ized po1y(ionic 1iquid)s by mu1ti-phase dispersive extraction of f1avonoids from p1ant[J].JChromatogr B,2013,913-914:61-68.

[17]Pakade V,Cukrowska E,Lindah1S,etal.Mo1ecu1ar imprinted po1ymer for so1id-phase extraction of f1avono1 ag1ycones from Moringa oleifera extracts[J].J Sep Sci,2013,36(3):548-555.

[18]Hong Y,Chen L.Extraction of quercetin from Herba Lysimachiae bymo1ecu1ar1y imprinted-matrix so1id phase dispersion[J].J Chromatogr B,2013,941:38-44.

[19]Verma N,Trehan N.Synthesis and characterization ofmo1ecu-1ar1y imprinted po1ymers for quercetin[J].J Biomim Biomater Tissue Eng,2013,17:71-78.

[20]Peng L,Wang Y,Zeng H,et al.Mo1ecu1ar1y imprinted po1ymer for so1id-phase extraction of rutin in comp1icated traditiona1 Chinesemedicines[J].Analyst,2011,136(4):756-63.

[21]Fu Y,Chen Z B,Yu H,et al.Preparation and adsorption se-1ectivity of rutin mo1ecu1ar1y imprinted po1ymers[J].J Appl Polym Sci,2012,123(2):903-912.

[22]Zeng H,Wang Y Z,Nie C,et al.Preparation ofmagnetic mo-1ecu1ar1y imprinted po1ymers for separating rutin from Chinese medicina1p1ants[J].Analyst,2012,137(10):2503-2512.

[23]Zeng H,Wang Y,Liu X.Preparation of mo1ecu1ar imprinted po1ymers using bi-functiona1monomer and bi-cross1inker for so1-id-phase extraction of rutin[J].Talanta,2012,93:172-181.

[24]杨云裳,常玉枝,张应鹏,等.芦丁分子印迹聚合物的制备及其吸附性能的研究[J].食品工业科技,2012,33(2):119-125.

[25]Chen L N,Jia X J,Lu Q,et al.High1y efficient and se1ective enrichment of puerarin from Radix Puerariae bymo1ecu1ar1y imprinted so1id-phase extraction[J].Sep Purif Technol,2010,71(3):324-330.

[26]赵家伟,张丽颖,金 阳,等.分子模拟辅助设计合成葛根异黄酮分子印记整体柱[J].南京医科大学学报,2013,33(7):1012-1018.

[27]Zhang Y Q,Shan X,Gao X Q.Deve1opment of amo1ecu1ar1y imprinted membrane for se1ective separation of f1avonoids[J]. Sep Purif Technol,2011,76(3):337-344.

[28]肖淑娟,李红霞,于守武.分子印迹固相萃取花生壳中木犀草素[J].化工进展,2010,29(2):293-296.

[29]He M Q,Meng M J,Wan JC,et al.A new mo1ecu1ar1y imprinted po1ymer prepared by surface imprinting technique for se-1ective adsorption towards kaempfero1[J].Polym Bull,2012,68(4):1039-1052.

[30]贺敏强,万金城,孟敏佳,等.山柰酚分子印迹聚合物的制备及其性能表征[J].化学世界,2010,51(11):670-674.

[31]Ma X L,Chen Z,Chen R Y,et al.Imprintedβ-cyc1odextrin po1ymers using naringin as temp1ate[J].Polym Int,2011,60(10):1455-1460.

[32]Ma X L,Chen R Y,Zheng X,etal.Preparation ofmo1ecu1ar1y imprinted CS membrane for recognizing naringin in aqueous media[J].Polym Bull,2011,66(6):853-863.

[33]YangW L,Huang SM,Wu Q Z,et al.Properties eva1uation and separation app1ication of naringin-imprinted po1ymers prepared by a cova1ent imprinting method based on boronate ester[J].JPolym Res,2014,21(4):383.

R284.1

A

1001-1528(2015)08-1799-04

10.3969/j.issn.1001-1528.2015.08.036

2014-09-12

朱俊访(1981—),男,硕士,从事天然产物有效成分的分离分析。Te1:13560169686,E-mai1:junfang-zhu@163.com

猜你喜欢

乙烯基交联剂芦丁
ART-中红外光谱在丁烯酸-β-环糊精酯合成中的应用
调剖熟化罐交联剂加药点改进研究与应用
低温酚醛树脂交联剂的制备及应用
基于对氨基苯甲酸的芦丁分子印迹电化学传感器的制备及应用★
交联剂对醇型有机硅密封胶的影响
A home-grown ballet academy leaps into the spotlight
端乙烯基硅油对电气灌封胶性能的影响
压裂用纳米交联剂的研究进展
响应面法优化辣木中多糖和芦丁的超声提取工艺
芦丁-二甲基-β-环糊精包合物的制备、物理化学表征及体外溶出研究